实时定量PCR技术在瘤胃微生物定量分析中的研究应用_刘大程 - 范文中心

实时定量PCR技术在瘤胃微生物定量分析中的研究应用_刘大程

07/24

2007年第43卷第21期

ReviewPapers・综述

实时定量PCR技术在瘤胃微生物定量分析

中的研究应用

刘大程1,2*,张

迪1,卢德勋2,高

民2,孙海洲2

(1.内蒙古农业大学动物科学与医学学院,内蒙古呼和浩特

010018;

2.内蒙古畜牧科学院,内蒙古呼和浩特

010030)

要:随着对瘤胃微生物研究的逐步深入,一些以分子生物学技术为基础的定量分析方法对瘤胃微生物的研究方

兴未艾。本文简要介绍了实时定量PCR技术的原理、操作程序以及该技术在反刍动物瘤胃微生物定量分析中的应用现状、取得的成果和前景展望。

关键词:Real-TimePCR;瘤胃微生物;综述;定量中图分类号:S816.3

文献标识码:A

文章编号:0258-7033(2007)21-0051-03

反刍动物在长期的进化过程中形成了独特的瘤胃发酵系统,瘤胃内寄居的大量微生物构成了一个复杂的微生物群落。由于瘤胃微生物生长需要复杂的营养条件和严格的厌氧环境,且共生依赖性强,早期的传统定量方法已不能满足研究发展的要求[1]。因此,一些以分子技术为基础的定量方法应运而生。Stahl等[2]首先以16SrRNA序列的寡核苷酸为探针利用分子杂交法对一些瘤胃微生物进行了相对定量以及动态监测。然而分子杂交法定量不稳定,结果重复性不好,因此在定量研究中仍然不够理想。Muyzer[3]和Zoetendal[4]又将变性梯度凝胶电泳(DGGE)技术应用在微生物定量和多样性研究中。但此方法只能粗略定量,不能精确反映微生物的数量变化。20世纪90年代后有关定量PCR的文献和方法才有报道出现。定量PCR(polymerase

后,模板扩增产物的量与荧光信号的强度之间存在正比关系,即模板的Ct值(每个反应管内的荧光信号到达设定的域值时所经历的循环数)与该模板起始拷贝数的对数存在线性关系,即起始拷贝数越多,Ct值越小。如今常用的荧光标记有SYBR荧光染料和TaqMan荧光探针[5]。因此,利用已知起始拷贝数的标准品做出标准曲线,横坐标代表起始拷贝数,纵坐标代表Ct值,只要获得未知模板的Ct值,通过与标准曲线比对,即可得出未知模板的起始拷贝数。

1.21.2.1

定量方法

荧光域值(threshold)的设定

PCR反应的前15

个循环的荧光信号作为荧光本底信号,荧光域值的缺省设置是3~15个循环的荧光信号的标准偏差的10倍。

chainreaction)技术是传统PCR技术的进一步延伸,而新近兴起的实时定量PCR(realtimequantitativePCR,

1.2.2标准曲线的制作mRNA定量常用的制作标准

曲线的方法是在质粒载体上用T7或SP6RNA聚合酶的启动子来亚克隆复制子,然后用DNase消化样品,同时对RNA精确定量。用光密度扫描仪测定RNA的浓度并转换成每毫克RNA有多少拷贝数。然后对

RT-PCR)就是在PCR反应体系中加入荧光标记物质,当荧光标记物与新合成的双链DNA嵌和后,就可根据荧光信号的累积实时监测整个PCR进程。RT-PCR技术的应用使传统定量方法中存在的一些弊端能够得到有效的解决。因此,RT-PCR技术在瘤胃微生态的研究中有着得天独厚的优势。

RNA进行梯度稀释,并分别进行实时定量PCR测定其最后以Ct值为纵坐标,以RNA模板拷贝数的对Ct值。

数为横坐标绘制出标准曲线。

1RT-PCR技术精确定量的理论基础1.1

定量原理

在PCR反应体系中加入荧光标记物

———————————————————————————

收稿日期:2006-07-14;修回日期:2006-09-22基金项目:国家自然科学基金(30460095、30560105)作者简介:刘大程(1968-),男,副教授,博士

22.1

利用RT-PCR方法对瘤胃微生物定量的基本程序

DNA的提取由于瘤胃内古细菌、细菌、真菌和

原生动物等的细胞组成有着很大的不同,其适宜的细胞破碎方法也各不相同。提取出的DNA经过纯化,测定其OD260/280,保证其OD值在1.7~1.9之间。

*通讯作者

2.2靶核酸片断的选定目前在分类鉴定中主要选

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择的靶片段是16S/18SrRNA,也可以是其相应的rD-但是,有些情况下,16S/18SrRNA并不能满足实验NA。

的需求,则需要寻找新的满足要求的特殊基因序列,例如ITS序列。

方法来确定瘤胃液及十二指肠液中2类主要原虫的数量。试验所提供的日粮为含21%或16%的中性洗涤纤维日粮。2组针对瘤胃原虫的特异性探针分别为P.

SSU-54f,5′-CAYGTCTAAGTATAAATAACTAC-3;P.

首先,要在GenBank上查找

;P.SSU-1747r,5′-CTCTAGGTGATWWGRTTTAC-3′;P.SSU-SSU-316f,5′-GCTTTCGWTGGTAGTGTATT-3′;2组特异性探539r,5′-CTTGCCCTCYAATCGTWCT-3′针利用传统PCR分别扩增出约1693bp和223bp的2个片段,用于做RT-PCR的标准品,从瘤胃原虫RT-

由于定量PCR直接测

2.3引物与探针的设计

目标微生物的16SrDNA序列或其特有的基因序列,然后寻找出其保守序列区域,在这段保守序列区域内设计引物和探针。当对某一特定菌株定量时,只要求所设计的引物具有特异性就够了。

2.4目标片段拷贝数的确定PCR分析结果可知,在2种中性洗涤纤维含量不同的日粮基础上,瘤胃原虫氮占瘤胃细菌氮的比例分别为

得的是目标片段的拷贝数。因此,如果要知道一定体积的样品中某种微生物的确切数量,那么就必须知道每个此种细菌中用来设计引物和探针的序列片段的拷贝数。现如今,用于确定目标片段拷贝数的方法有很多,例如荧光原位杂交,细胞原位杂交,Southern杂交等。其中,Southern杂交最后通过硝酸纤维素膜上的杂交印记来确定目标基因的拷贝数,该法操作简单,费用较低,较为常用。

4.8%和12.7%,而排向十二直肠处的瘤胃细菌氮占5.9%和11.9%。Lucy等[8]也以编码18SrRNA的基因为靶基因,利用RT-PCR技术对瘤胃内毛虫属纤毛虫和密毛虫属纤毛虫进行定量分析。结果表明,内毛虫属纤毛虫占瘤胃总原虫数量的98%,对于同一种类的羊这个数值相对恒定,而对于不同种类的羊其差异较大。

赵玉华等[9]利用RT-PCR技术,在日粮精粗比分别为4∶6和6∶4条件下,以甲酸甲烷杆菌的16S/18SrDNA序列和马氏甲烷八叠球菌特有的ITS序列为靶序列分别对其进行了定量分析。结果表明,利木赞肉牛与荷斯坦黑白花奶牛每毫升瘤胃液中分别有1.31×106个和2.34×(P<105个甲酸甲烷杆菌,两者差异极显著

3RT-PCR技术在瘤胃微生物研究中的应用

鉴于RT-PCR技术在定量分析中的多种优势,越来越多的研究者将此技术应用到瘤胃微生物的定量分析中来,并取得了较好的定量结果。Tajima等[6]根据瘤胃内若干种微生物设计成多种探针,当试验牛的日粮由干草转变为谷物时,利用RT-PCR技术对瘤胃内多种微生物进行了定量分析。在干草日粮条件下占优势的产琥珀酸丝状杆菌在日粮转变后的第3天,其DNA的数量减少了20倍,第28天降低了57倍,生黄瘤胃球菌DNA的浓度也呈下降趋势,这些结果与早期以体外培养法所获得的结果相吻合。栖瘤胃普雷沃氏菌和乳酸普雷沃氏菌DNA的增加量分别为7倍和263倍。在第28天时,栖瘤胃普雷沃氏菌DNA的量同以干草为日粮时相比减少了3倍。然而,乳酸普雷沃氏菌

0.01),这与肉牛日粮中粗料比例较高有关。对甲酸甲烷杆菌采用RT-PCR方法测得的数量低于采用传统最大或然数法测得的数量,但两者之间具有很高的相关性(r=0.957,P<0.01),说明采用RT-PCR的方法能够如实反映瘤胃微生物数量的变化。试验中以马氏甲烷八叠球菌特有的ITS序列为靶序列,采用SYBRGreen

I荧光染料RT-PCR法进行了定量检测,与甲酸甲烷杆菌相比,其扩增效率较差,但仍能满足RT-PCR对扩增效率的要求。

Koike等[10]利用RT-PCR技术对瘤胃内3种纤维分解菌进行定量分析,进而研究这些纤维分解菌对纤维的附着能力。试验用尼龙袋包裹干草茎经瘤胃瘘管投放,将瘤胃内容物分为固相和液相两相进行采集,分别进行RT-PCR定量分析。结果表明,所用干草茎在瘤胃内投放5min后,附着于植物纤维上的产琥珀酸丝状杆菌的数量达到105/gDM,另外两种瘤胃球菌(生黄瘤胃球菌和白色瘤胃球菌)的数量为104/gDM。10min后,其数量增长10倍。3种纤维分解菌的数量一般在投放后24h(产琥珀酸丝状杆菌为109/gDM,生黄瘤胃球

DNA的量却增加了10倍。牛链球菌DNA在日粮转变初期增加了67倍,此后,在第28天其DNA量同日粮未转变时相比却减少了。同样,反刍兽新月形单胞菌的

DNA开始时增加了8倍,到第28天保持在2倍的增长量。

由于缺乏一种精确的、可重复的标记物来区分瘤胃原虫氮和瘤胃细菌氮,所以限制了在活体水平上对瘤胃原虫的定量分析。Sylvester等[7]应用RT-PCR技术,以编码18SrRNA的基因为靶基因设计发展了一种

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[4]

菌为107/gDM)或48h(白色瘤胃球菌为106/gDM)达到峰值。

ZoetendalEG.Temperaturegradientgelelectrophoresisanalysisfromhumanfecalsamplesrevealsstableandhost-specificcommu-nitiesofactivebacteria[J].JApplEnvironMicrobiol,1998,64(10):

4结论

[5]

3854-3859.

HeidCA,StevensJ,LivakKJ.RealtimequantitativePCR[J].GenomeRes,1996,6:986-994.[6]

TajimaK,AminovRI,NagamineT.Diet-dependentshiftinthebacterialpopulationoftherumenrevealedwithreal-timePCR[J].ApplEnvironMicrobiol,2001,67(6):2766-2774.

[7]SylvesterJT,KarnatiSKR,YuZ.Developmentofanassaytoquan-

tifyrumenciliateprotozoalbiomassincowsusingreal-timePCR[J].JNutr,2004,134:3378-3384.

[8]LucyCS,AndrewF,TooveyAJ,etal.Developmentandvalidation

ofareal-timePCRmethodtoquantifyrumenprotozoaandexamina-tionofvariabilitybetweenentodiniumpopulationsinsheepofferedahay-baseddiet[J].ApplEnvironMicrob,2006,72(1):200-206.[9]

赵玉华,王加启.利用实时定量PCR对瘤胃甲酸甲烷杆菌定量方法的建立与应用[J].中国农业科学,2006,39(1):161-169.

Real-TimePCR技术不仅实现了PCR从定性到定快速等特点量的飞跃,而且在保持了传统PCR灵敏、

的基础上,还具有特异性强,定量准确,重复性好,不存在PCR过程后处理的污染问题等优点,发展极为迅速。在微生物定量分析的实际应用中,RT-PCR技术已显示出了巨大的潜力,随着技术的进一步完善RT-高效率的定量方法。PCR必将成为一种广泛应用的、

参考文献:

[1]RussellJB,RychlikJL.Factorsthatalterrumenmicrobialecology

[J].Science,2001,292:1119-1122.[2]

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[3]MuyzerG.Applicationofdenaturinggelelectrophoresis(DGGE)and

temperaturegradientgelelectrophoresis(TGGE)inmicrobialecolo-gy[J].AntonVanLeeuw,1998,73:127-141.

[10]KoikeS,PanJ,KobayashiY,etal.KineticsofInSaccoFiber-At-

tachmentofRepresentativeRuminalCellulolyticBacteriaMonitoredbyCompetitivePCR[D].JapanSapporo:HokkaidoUniversity,Grad-uateSchoolofAgriculture,060-8589.

ApplicationofReal-TimePCRApproachforQuantificationandAnalysisofRuminalBacteriaLIUDa-cheng1,2*,ZHANGDi1,LUDe-xun2,GAOMing2,SUNHai-zhou2

(1.CollegeofAnimalScienceandAnimalMedicine,InnerMongolianAgriculturalUniversity,MongoliaHuhhot

010018,China;2.InnerMongolianAcademyofAnimalSciences,MongoliaHuhhot010030,China)Abstract:Withthestudyingofruminalbacteriabecomingintensivegradually,somemethodsofquantitativeanalysisbasedonmolecularbiologytechnologyareintheascendantforstudyingrumenmicrobe.Thispaperillus-tratedthetheory,operationprocessofreal-timePCRanditsactualityofapplication,achievementandprospectinfuture.

Keywords:real-timePCR;ruminalbacteria;areview;quantification! ! ! ! ! ! ! ! ! ! ! ! ! "

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