藏獒源犬细小病毒的分离鉴定_梁璐琪 - 范文中心

藏獒源犬细小病毒的分离鉴定_梁璐琪

07/21

():中国兽医科学 2012,4202144149-

ChineseVeterinarScience y 

()中图分类号:S852.659.2 文献标志码:A 文章编号:16734696201202014406 ---

藏獒源犬细小病毒的分离鉴定

梁璐琪1,张 恒1,魏胜男1,李思琪1,舒 龙1,钟志军1,符华林1,

曹随忠1,胡延春1,余树民1,李成军2,陈 英2,李万清2,彭广能1*

(四川农业大学动物医学院动物疫病与人类健康四川省重点实验室,四川雅安 61.25014;

)名山县农业局,四川名山 62.25100

在藏獒中的流行情况,将临床上经胶体金试纸检测为阳性的藏獒直肠CPV)  摘要:为弄清犬细小病毒(

,、棉拭子8份处理后接种猫肾传代细胞(分离到6株病毒,对其进行了血凝试验(半数组织培F81细胞)HA)

的测定,理化性质鉴定,提取分离株D扩增其一特养物感染剂量(TCIDNA并通过聚合酶链式反应(PCR)50)异性片段和V并与G接毒后第6~1P2全序列,enBank上登录的CPV毒株进行比对。结果表明,3天在F81

,细胞上出现了明显的细胞病变(表现为细胞融合、变圆或拉长;所得分离株能使猪红细胞发生凝集反CPE)

711

、、//应,血凝效价为2能抗酸(热(从细胞培养物中分别扩H3)60℃)200mLL乙醚、480mLL氯仿;~2;p

增出与特异性片段825bP2全基因1755bP2序列与GenBank p一致以及与Vp一致的条带。将扩增的V上登录的HQ结果显883267.1、FJ222823.1、FJ005214.1等10个国内外CPV分离株的VP2序列进行比对;)示,与北京地区一分离株(的同源性最高,为9但均HQ883267.19.0%~99.6%。所得分离株为不同毒株,为CPV2a型。-

关键词:犬细小病毒;藏獒;分离;鉴定

IsolationandidentificationofCPVstrainsfromTibetanmastiff        

1111111

,,,LIANGLuiZHANG HenWEIShennanLISiiSHULonZHONGZhiunFU Hualin -q , - -q ,  --g,gg,j

1112

,,,CAOSuizhonHU YanchunYUShuinLIChenun -- -m -g,gj

221

CHEN YinLIWaninPENGGuannen -q -g,g,gg

(/1.KeLaboratoroAnimalDiseaseand Human HealthoSichuan ProvinceColleeoVeterinarMedicine,    y yf f gf y  

Sichuan AriculturalUniversitYa’an625014,China;2.Minshan CountBureauo  gy,gy f

Ariculture,Minshan625100,China)gg

:(,bstractTostudtheeidemioloofcanineCPV)inTibetanmastiffeihtfecalsamlesarvovirus  A        ypgygpp  

collectedbcottonswabfrom TibetanmastiffwhoseCPVtestresultswereositiveaccordintothewere             ypg  immuneColloidalGoldkit.SixstrainswereisolatedbcultivationinF81cells.Thesestrainswereidenti            -y fiedbHA,TCIDassa.Theresultsshowedthattheticalctoathoeniceffecthsicochemical         yyypypgpy50, (CPE)wassottedinF81cellsfrom6to13dasafterinfection.Theisolateswereabletoalutinateor              -pyggp

711 

,(),(cineerthroctesandtheHAtiterwerefrom2to2.Thesestrainswereallantiacidantiheat60H3            --yyp//(℃)andinsensitiveto200mLLaetherand480mLLchloroform.TheVP2gene1755banda825b          p)p

’V’(,framentonitwereamlifiedbPCR.ComaredtheisolatesP2with10referencestrainsHQ883267.1         gpyp FJ222823.1,FJ005214.1,etal)from GenBank,themostsimilaronewasHQ883267.1withidentitof       y 99.6%.AllisolatesweretobeCPV2a.99.0%toroved       -p

:;;KewordsCPV;Tibetanmastiffisolationidentification y 

;修回日期:收稿日期:2011082920111123----

);;基金项目:四川省教育厅重点项目(教育部“长江学者和创新团队发展规划”创新团队项目(四川农09ZA082IRT0848)

)业大学双支计划项目(00270706

,::作者简介:梁璐琪(男,四川雅安人,硕士生。*通讯作者,n.sicau1984Tel13981606712,E-mail63.com-)@1pg

第2期            藏獒源犬细小病毒的分离鉴定  梁璐琪等:

145

已有3000多年的育成  藏獒生活在青藏高原, 

主要分布于我国西部地区的西藏、青海和四川历史,

等省区,不仅是我国特有的珍贵犬种,而且也是我国人民引以为骄傲和自豪的保种动物。但是近年来,犬细小病毒病对藏獒,特别是幼獒的感染和危害越来越严重,其发病率和死亡率比一般的犬种更高,多数藏獒虽经免疫但仍有部分仍得不到有效保护,甚至有一些病犬久治不愈最终死亡。这使许多藏獒养殖户经济上蒙受了巨大的损失,成为当前危害藏獒养殖业最严重的传染病。目前国内外对犬细小病毒(分离鉴定的报道很多,但藏獒源CCPV)PV的分离

]17-

。为了进一步了解和掌握C鉴定却鲜有报道[PV在藏獒中的流行变异情况,笔者收集了来源于四川雅安、成都、乐山等地的经CPV胶体金试纸检测为并用F阳性的藏獒病犬的直肠棉拭子,81细胞进行了藏獒源CPV毒株的分离鉴定。

,预期扩增的目的片TTCTAGGTGCTAGTTGA3′-

段大小分别为825b755bn -p和1p。引物由上海Ivitroen公司合成。g

1.4 病毒的分离

/细胞培养100mLL样品混悬液)∶V(  按V(

液)同步接毒F加入含=1∶30~1∶60,81细胞,

//置于3150mLLFBS的DMEM后,7℃、50mLL ,换液,再加1/CO50mLLFBS的 2中2~4h继续培养2配制分别DMEM,4h。每日观察细胞,//根据细胞含150mLL和50mLLFBS的DMEM, 生长情况及时改变FBS的浓度。待出现大面积

并用P置于-2CPE时收毒,EG6000浓缩,0℃中-备用。1.5 PCR鉴定

1.5.1 DNA提取 将1.4中浓缩后的病毒液200

按照病毒DL加入1.5mLEP管中,NA提取试剂 μ

盒说明书提取病毒D进行下一步P或NA,CR扩增,避免反复冻融。者置于-20℃保存,

1.5.2 VP2特异性片段的PCR扩增 采用25μL

体系进行扩增:模板DNA1.0μL,ExTa5  q(

2+/)UL)0.125μL,10×ExTaMlus gPq缓冲液(μ

/各2.上游2.5μL,dNTP混合物(5mmolL)2μL,

)引物(下游引物(加入灭菌水使P11μL,P2)1μL,

1 材料与方法

1.1 主要试剂

81细胞购于中国科学院上  分离病毒所用的F

海细胞库;TaDNA聚合酶为大连宝生物工程有限q 公司产品,病毒D琼脂糖凝胶NA提取试剂盒、DNA回收试剂盒、DNA Marker均为天根生化科技、公司产品,小牛血清(FBS)L-谷氨酰胺、DMEM培养液均为GIBCO公司产品。1.2 病料采集与处理

韩国PV胶体金试纸(  选择临床上经C

检测为阳性的藏獒,将灭菌棉签伸入BIOINDIST)擦拭直肠壁,沾取肠黏膜上皮,将棉发病藏獒肛门,

签头置于1.加入无血清的DMEM至15mLEP管, 每次化冻后在振荡器上振荡1mL。反复冻融3次,

in后再进行下一次冻融。冻融后将液体转入~2m

用无血清DMEM反复冲洗、振荡15mL离心管中,棉签头3~4次,并将冲洗后的液体也转入离心管/中,最后加无血清DM制成1EM至10mL,00mLL/。取上清样品混悬液。8000rmin离心10~15min 液,经0置于-.22μm微孔滤膜过滤后,20℃备用。1.3 引物的设计与合成

enBank上公布的CPV的VP2核酸序  根据G

)列,分别设计扩增V和VP2片段(P1、P2P2全基因(特异性引物各1对,上游引物PP3、P4)1∶5′-,下游引物AACGGATGGGTGGAAATCAC3′-;上游P2:5′TAGCTTCAGTAATA3′-TAATAG-

引物P3:5′CAATGAGTGATGGAGCAGTTCA-C-下游引物PACCAGAC-3′,4:5′-AATATAATT-

反应体系达到25μL。PCR程序:96℃预变性180

;;,,94℃变性30s52℃退火35s72℃延伸40s30s

。P/个循环;最后延伸1于10minCR结束后,0gL琼脂糖凝胶中电泳,观察并记录结果。

1.5.3 VP2全基因的PCR扩增 采用50μL体系

/模板D进行扩增:NA2.5μL,ExTa5UL)  q(μ

2+

)0.25μL,10×ExTaMlus5.0μL, gPq缓冲液(

/各2.上游引物(dNTP混合物(5mmolL)4μL,P3)

)下游引物(加入灭菌水使反应体系达2μL,P42μL,

;到50μL。PCR程序:96℃预变性180s95℃变性

,,,最30s50℃退火30s72℃延伸140s35个循环;。P/后延伸1在8g0minCR完成后,L琼脂糖凝胶

观察并将目的条带切下,用普通琼脂糖上进行电泳,

凝胶D送NA回收试剂盒对目的产物进行回收后,上海Invitroen公司测序。g

1.6 血凝试验(HA)

牛、山羊、小鼠、犬、猫、兔等血  无菌采集健康猪、

液,以阿氏液为抗凝剂。用PBS洗涤红细胞3~5/次,制成红细胞泥,最后加入含1gL牛血清白蛋白/制成1的PBS,0mLL红细胞悬液。按文献[89]-的方法测定各分离毒株对上述动物红细胞的HA

效价。

146

中国兽医科学第42卷

1.7 TCID50效价的测定

]进行,将各分离株第5代细胞培养10  按文献[

-1

。每孔加入处于对数物做10倍稀释(100-6)~1

4℃过夜。然后再按1.7的方法计算出各分离株的

TCID50效价。

再加入各个稀释度的病增长期的F81细胞100μL,毒液1最后两孔作为空白对照。00μL,37℃吸附2

换液继续培养。此后每日观察C至第5PE,~3h,

天判读结果。以Reeduench法计算TCID-M50

效价。

1.8 病毒的理化性质检测

方法将各分离株病毒进行如下处11]  按文献[

理:60℃水浴作用30min;4℃,H3环境中作用2p//h;480mLL氯仿4℃作用10min;200mLL乙醚

2 结果

2.1 病毒的分离

有6份  采集的8份藏獒直肠棉拭子经过处理,

在接种F81细胞后6~13d出现了较为明显的即表现为细胞融合、变圆或者细胞变细变长,CPE,

,呈现“拉网”病变(见图1)同批次空白对照细胞正、常。各分离株依次被命名为CPV-YA-ZA1CPV-

、、、YA-ZA2CPV-YA-ZA4CPV-YA-ZA5CPV-CD-。ZA1、CPV-LSZ1

-Y

图1 CPV分离株在F81细胞上的变化

Fi.1 ThecellularchanesinF81cellsresultedfromisolatesofCPV         gg

正常的F分离株在FA:81细胞对照;B:81细胞上产生的CPE;A:NormalF81cellscontrolB:TicalCPEofisolatesinF81cell       yp

2.2 PCR鉴定

2.2.1 VP2特异性片段的扩增 用引物P1、P2进

/行P结果产物在1CR扩增,0gL琼脂糖凝胶中电泳见后出现了与预期值825bp大小相符的特异性条带(

)。表明各分离株的细胞培养物中存在C图2PV

2.2.2 VP2全基因的扩增 用引物P3、P4进行

/结果,产物在8gPCR扩增;L琼脂糖凝胶中电泳后出现了与预期值1755b p大小相符的特异性条带(),见图3说明扩增出了VP2全基因序列。将分离株所测得的序列与GenBank上登录的CPV2-

(、GU569943.1,China)CPV2a(GU569947.1,-;;、ChinaHQ883267.1,BeiinFJ005259.1,Italjgy)

;CPV2b(GU569944.1,GuanzhouFJ222823.1,-g;、ItalAY742951.1,US)CPV2c(FJ222821.1,-y

;;)的ItalFJ005214.1,SainGQ865519.1,Greeceyp结果显示,各分离株间的同源VP2序列进行比对,性为9分离株与北京分离的参考株8.7%~99.4%;为9HQ883267.1的同源性最高,9.0%~99.6%(;见表1)各分离株VP2氨基酸残基在L87M、I101T、A300G、D305Y的变异情况与CPV2a的变-

。异一致。表明6个分离株均为CPV2a-

图2 6株分离病毒的PCR结果Fi.2 DetectionofisolatesbPCR   gy 

;;阳性对照P阴性对照M:DL2000DNA Marker1:ositivecontrol2: ;;;Neativecontrol3:CPV-YA-ZA14:CPV-YA-ZA25:CPV-YA- g;;ZA4;6:CPV-YA-ZA57:CPV-CDZA18:CPV-LSZA1--

第2期            藏獒源犬细小病毒的分离鉴定  梁璐琪等:

147

;C红细胞的血凝效价为2PV-YA-ZA5株对猪红10

;C细胞的血凝效价为2PV-LSZA1株对猪红细-7

。C、胞的血凝效价为2PV-YA-ZA1CPV-CDZA1-4

;、株对猫红细胞的血凝效价为2CPV-YA-ZA2

图3 6株分离病毒VP2基因全序列的扩增结果Fi.3 DetectionofVP2geneofisolatesbPCR     gy 

;;阳性对照P阴性对照M:DL2000DNA Marker1:ositivecontrol2: ;;;Neativecontrol3:CPV-YA-ZA14:CPV-YA-ZA25:CPV-YA- g;;ZA4;6:CPV-YA-ZA57:CPV-CDZA18:CPV-LSZA1--

、CPV-YA-ZA4CPV-YA-ZA5株对猫红细胞的血凝

3;效价为2CPV-LSZA1株对猫红细胞的血凝效价-

。这表明分离株对猪红细胞有很好的凝集,为2对

但对其他动物的红细猫红细胞有一定的凝集能力,

]89-

。胞基本不凝集,这与国内外相关报道一致[

2.3 分离株的血凝试验

/牛、山羊、小0mLL猪、  用6株分离株分别与1

鼠、犬、猫、兔红细胞进行凝集反应。结果显示,、CPV-YA-ZA1CPV-CDZA1株对猪红细胞的血凝-

11

;C、C效价为2PV-YA-ZA2PV-YA-ZA4株对猪

2.4 分离株TCID50的测定及其理化特性鉴定

酸、氯仿、乙醚处理  测定了各分离株经过高温、

前后的T结果见表2。通过比较发现处CID50效价,理前后T无明显CID50效价相差都小于1个数量级,、变化。说明这6株分离病毒能耐受热(酸60℃)()、氯仿和乙醚。H3p

表1 藏獒源细小病毒分离株VP2全基因与参考株的同源性比较Table1 TheVP2genehomoloiesofisolatesandthereferences        g

Strain1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 

1 

2 

3 

4 

5 

6 

7 

8 

9 

10 

11 

12 

13 

14 

15 

% 

16

99.29.09.48.79.38.59.09.69.09.08.89.09.08.88.9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9

0.8 1.0 0.6 1.3 0.7 1.6 1.0 0.4 1.0 1.0 1.2 1.0 1.0 1.2 1.1 

1.0 0.8 0.9 1.0 1.0 0.4 0.4 0.5 0.7 0.6 0.5 0.5 0.6 0.5 

0.5 0.6 1.1 1.7 1.1 0.6 1.2 1.2 1.4 1.1 1.2 1.4 1.3 

1.0 0.9 1.6 1.0 0.5 1.0 1.0 1.2 1.0 1.0 1.2 1.1 

1.1 1.7 1.0 1.0 1.1 1.3 1.3 1.2 1.1 1.3 1.2 

1.7 1.0 0.9 1.2 1.3 1.4 1.1 1.2 1.4 1.3 

0.7 1.1 0.7 0.9 0.9 0.9 0.7 0.9 0.8 

0.6 0.3 0.4 0.5 0.5 0.3 0.5 0.3 

0.6 0.6 0.8 0.6 0.6 0.8 0.7 

0.5 0.4 0.4 0.2 0.4 0.3 

0.5 0.5 0.3 0.5 0.4 

0.5 0.3 0.5 0.3 

0.3 0.5 0.3 

0.2 0.1 

0.1

99.09.29.19.09.09.69.69.59.39.49.59.59.49.5 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9

99.59.48.98.38.99.48.88.88.68.98.88.68.7 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9

99.09.18.59.09.59.09.08.89.09.08.88.9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9

98.98.39.09.08.98.78.78.88.98.78.8 9 9 9 9 9 9 9 9 9 9

98.39.09.18.88.78.68.98.88.68.7 9 9 9 9 9 9 9 9 9

99.38.99.39.19.19.19.39.19.2 9 9 9 9 9 9 9 9

99.49.79.69.59.59.79.59.7 9 9 9 9 9 9 9

99.49.49.29.49.49.29.3 9 9 9 9 9 9

99.59.69.69.89.69.7 9 9 9 9 9

99.59.59.79.59.6 9 9 9 9

99.59.79.59.7 9 9 9

99.79.59.7 9 9

99.89.9 9

99.9

、、右上部分为不同毒株V左下部分为不同毒株的差异度;分别为藏獒源细小病毒分离株(P2序列的相似度,1~6:CPV-CDZA1CPV-LSZA1--、、、;分别为国内外分离到的细小病毒毒株,CPV-YA-ZA1CPV-YA-ZA2CPV-YA-ZA4CPV-YA-ZA5)7~16:GenBank登录号分别为GU569943.1、GU569947.1、HQ883267.1、FJ005259.1、GU569944.1、FJ222823.1、AY742951.1、FJ222821.1、FJ005214.1、GQ865519.1;TherihtuerofTable1istheercentidentitiesofVP2geneamonvirusandtheleftloweristhediverences1-6:CPVisolatesfrom Ti -            -     -gpppgg (,,,,,);betanmastiffCPV-CDZA1CPV-LSZA1CPV-YA-ZA1CPV-YA-ZA2CPV-YA-ZA4CPV-YA-ZA57-16:CPVisolatesfromhomeand --    ,:abroadtheGenBankaccessionGU569943.1,GU569947.1,HQ883267.1,FJ005259.1,GU569944.1,FJ222823.1,AY742951.1,FJ222821.1,  FJ005214.1,GQ865519.1,resectivelpy

表2 各分离株经热、酸和有机溶剂处理前后的TCID50效价

,,Table2 TCIDfisolatestreatinwithheatacidoranicsolventornone       50ogg 

处理方式Methods

不处理Nottreated  60℃H3 p

氯仿Chloroform 乙醚Aether 

CPV-YA-ZA1

(/)TCIDmL50

5 1.3×10

5 

1.0×10

5 

0.5×10

0.5×10 

5 

0.6×10

CPV-YA-ZA2

(/)TCIDmL50

5 1.0×10

5 

0.8×10

5 

0.3×10

0.2×10 

5 

0.4×10

CPV-YA-ZA4

(/)TCIDmL50

5 1.6×10

5 

1.4×10

5 

0.8×10

0.9×10 

5 

0.9×10

CPV-YA-ZA5

(/)TCIDmL50

5 1.3×10

5 

0.9×10

5 

0.6×10

0.5×10 

5 

0.5×10

CPV-CDZA1-

(/)TCIDmL50

5 2.0×10

5 

1.8×10

5 

1.3×10

1.4×10 

5 

1.2×10

CPV-LSZA1-

(/)TCIDmL50

50.8×10

0.4×10

0.1×10

0.1×10

0.2×10

148

中国兽医科学第42卷

3 讨论

PV的分离鉴定之前未见有相关报道。  藏獒源C

本试验从8份患病藏獒的直肠棉拭子中成功分离到分析比对其V藏獒源6株CPV,P2全基因序列,

应为CPV各分离株间的同源性为98.7%~99.4%,不同病毒。根据分离株VP2全基因的比对结果和

VP2上氨基酸残基的变异情况,6株分离株均为

[2]13-

。1至今已有CPV2a978年首次发现CPV1-

、、CPV2、CPV2aCPV2bCPV2c等亚型,国内----[4]15-

。病毒由CCPV仍以CPV2a流行为主1PV2--

要作用,但结果易受红细胞种类、H和温度等因素p的影响。由于CPV对不同动物红细胞的敏感性不

8]

,、同[而且C猫细小病毒(水貂肠炎病毒PV、FPV)

(都能凝集猪红细胞,所以,笔者选取了猪、MEV)牛、山羊、小鼠、犬、猫、兔等7种动物的红细胞进行同时严格把p试验温度控制鉴定,H值控制在7.2,在4℃或在冰浴中进行,在如此较为严格的试验条件下得到的结果与C进一步佐PV的特性完全相符,证了所分离病毒的可靠性。

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进化为CPV2a是由于VP2上4个氨基酸残基位-

点(发生了变异,本L87M、I101T、A300G、D305Y)次分离的6个毒株在上述4个位点的变异情况与说明CCPV2a的相同,PV在藏獒中的流行情况与-

国内的流行情况一致。这为藏獒源CPV分子流行病学调查和预防控制奠定了重要的前期工作基础。PV的病料多数来源于死亡动物剖  以往分离C

解后采集的内脏实质器官或小肠内容物,这显然不适用于患病期间藏獒的采样。直接采集粪便虽然也

14]

,可以分离到病毒[但是粪便排出后容易受到环境

的污染以及动物排便的时间不受采样人员的控制以致不能及时得到粪便样品。在本研究中,为了调查和取样的方便,笔者尝试了用直肠棉拭子法采样,既减少污染,又能及时采到样能保证样品的新鲜度、

品、节约采样时间。本研究初期,笔者也多次试图直接用胶体金试纸检测CPV后剩下的粪便液体用于病毒的分离,但都没有成功,这可能是由于胶体金试使病纸管中稀释液的某些成分破坏了病毒的结构,毒丧失了侵袭细胞的能力。当然直肠棉拭子法采集的直肠内容物的量通常不恒定,再加上粪便中毒素和组织分解代谢产物可能会对培养细胞产生一定的如何处理直肠内容物,尽量减少对病毒影响。因此,

的破坏,以及接种F81细胞的时机和接种的量或比例成为能否成功分离病毒的关键。通过摸索,初步认为首先用无血清的DMEM及时处理直肠棉拭

/子,并将其配制成1一般按V00mLL样品悬液,(/细胞培养液)100mLL样品混悬液)∶V(=1∶30

并用含F0在细胞传代时同步接入,BS150~1∶6 //mLL和50mLL的DMEM及时调整细胞培养液

中F让细胞在接毒后第4~5天生长至BS浓度,再过1~2d出现较为明显的C80%左右,PE。这些经验可能为用粪便或直肠棉拭子法分离病毒提供有益的借鉴和参考。

PV的分离鉴定过程中发挥着重  血凝试验在C

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(责任编辑 胡弘博) 


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