化工专业实验
实验名称 质粒DNA的提取与琼脂糖凝胶电泳 班级 化21 姓名 张腾 学号 2012011864 成绩 实验时间 2014.12.26 同组成员 王乙汀、陈秉伦、梁有向 1 实验目的
（1）掌握碱裂解法提取质粒的原理和方法
（2）掌握琼脂糖凝胶电泳分离鉴定DNA的原理和方法。
2 实验原理
2.1质粒
质粒（plasmid）是在细菌中以独立于染色体之外的方式存在，是细菌染色体外的小型双链环状DNA复制子。理论上讲，所有的细菌株系都含有质粒，有些质粒携带有帮助其自身从一个细胞转入另一个细胞的信息，即F质粒，有些则表达对一种抗生素的抗性，即R质粒，还有一些携带的是参与或控制一些不同寻常的代谢途径的基因即降解质粒。质粒的大小不定，小的不到1kb，大的超过500kb，每个质粒都有一段DNA复制起始点的序列，它帮助质粒DNA在宿主细胞中复制。对细菌的某些代谢活动和耐药性表型具有一定的作用。目前，已发现有质粒的细菌有几百种，已知的绝大多数的细菌质粒都是闭合环状DNA分子(简称cccDNA)。细菌质粒的相对分子质量一般较小，约为细菌染色体的0.5%～3%。根据相对分子质量的大小，大致上可以把质粒分成大小两类：较大一类的相对分子质量是40×106以上，较小一类的相对分子质量是10×106以下(少数质粒的相对分子质量介于两者之间)。每个细胞中的质粒数主要决定于质粒本身的复制特性。按照复制性质，可以把质粒分为两类：一类是严紧型质粒，当细胞染色体复制一次时，质粒也复制一次，每个细胞内只有1～2个质粒；另一类是松弛型质粒，当染色体复制停止后仍然能继续复制，每一个细胞内一般有20个左右质粒。一般分子量较大的质粒属严紧型。分子量较小的质粒属松弛型。质粒的复制有时和它们的宿主细胞有关，某些质粒在大肠杆菌内的复制属严紧型，而在变形杆菌内则属松弛型。在基因工程中，常用人工构建的质粒作为载体。人工构建的质粒可以集多种有用的特征于一体，如含多种单一酶切位点、抗生素耐药性等。常用的人工质粒运载体有pBR322、pSC101。pBR322含有抗四环素基因(Tcr)和抗氨苄青霉素基因(Apr)，并含有5种内切酶的单一切点。如果将DNA片段插入EcoRI切点，不会影响两个抗生素基因的表达。但是如果将DNA片段插入到Hind III、Bam H I 或 Sal I切点，就会使抗四环素基因失活。这时，含有DNA插入片段的pBR322将使宿主细菌抗氨苄青霉素，但对四环素敏感。没有DNA插入片段的pBR322会使宿主细菌既抗氨苄青霉素又抗四环素，而没有pBR322质粒的细菌将对氨苄青霉素和四环素都敏感。pSC101与pBR322相似，只是没有抗氨苄青霉素基因和PstI切点。质粒运载体的最大插入片段约为10 kb(kb表示为千碱基对)。
图1. 质粒作为载体在基因工程中的应用
应用质粒作为基因克隆的载体分子，携带外源基因进入细菌体内进行扩增或表达，一个重要前提条件是要获得批量纯化的质粒DNA分子。质粒的提取方法很多，大多包括3个主要步骤：细菌的培养、细菌的收集和裂解。在质粒DNA的分离和纯化过程中，毫无疑问，宿主细胞的裂解是分离质粒DNA实验操作的关键步骤。常用的质粒DNA分离方法有3种：碱裂解法、煮沸法和去污剂裂解法。前两种方法比较剧烈，它们可以破坏碱基配对，使宿主细胞的线性染色体DNA变性，而共价闭合环状DNA由于拓扑缠绕，两条链不会互相分离。当外界条件恢复正常时，质粒的DNA双链又迅速恢复原状，重新形成天然的超螺旋分子，其大小范围在1KB至200kb以上不等。所以，质粒DNA提取与纯化是最基本的分子生物学实验技术，其中，碱裂解法提取的质粒产量高、纯度好，是一种最为常用的方法。
2.2碱裂解法
碱裂解法提取质粒的实验原理是在pH 12.0 ~ 12.6碱性环境中，细菌的线性大分子量染色体DNA变性分开，而共价闭环的质粒DNA虽然变性但仍处于拓扑缠绕状态。将pH调至中性并有高盐存在及低温的条件下，大部分染色体DNA、大分子量的RNA和蛋白质在去污剂SDS的作用下形成沉淀，而质粒DNA仍然为可溶状态。通过离心，可除去大部分细胞碎片、染色体DNA、RNA及蛋白质，质粒DNA尚在上清中，收集上清即可得到富集的质粒DNA。
近年来，随着基因治疗和DNA疫苗的发展，质粒逐渐成为一种新型的生物大分子医药产品，药用质粒的大规模制备成为生物下游过程的重要研究课题。
采用此碱裂解法制备高拷贝数质粒（如pUC系列）时，质粒DNA的产量通常约为3～5μg/ml菌液。随着生化技术的发展，市场上出现了商品化的试剂盒用于提取及纯化质粒，有些试剂盒采用了传统的SDS碱裂解法，结合DNA制备膜技术，具有高效、快速、方便之特点。还有些试剂盒利用层析的原理纯化质粒DNA，DNA分子中磷酸二酯链骨架在高盐作用下脱水，使得暴露的磷酸基团吸附硅胶，经水溶性缓冲液重新水化后，DNA能从层析柱上回收。大多数试剂盒分离纯化的原理为先使经过分离的质粒DNA吸附在柱或膜上，然后常规用乙醇洗涤，最后用水将吸附在柱上或膜上的DNA用水溶解下来。实验中采用的普通质粒提取试剂盒为Tiangen 普通质粒小提试剂盒。
下图为质粒DNA制备的原理。
图 质粒DNA制备原理
2.3凝胶电泳
电泳技术是分离、纯化DNA和鉴定DNA大小的重要方法。生物大分子如核酸、蛋白质、多糖等，在一定的pH条件下，可以解离成带电荷的离子。在电场中这些带电荷的离子，可以根据电荷的性质向正极或负极移动。这种带电荷物质在电场中向其相反电极泳动的现象称为电泳。在电泳过程中通常要考虑泳动率，泳动率又称迁移率，是指带电荷颗粒单位时间荷单位电场强度下，在电泳介质中泳动的距离。泳动率与样品分子荷电密度、电场中电压及电流成正比，与样品的分子大小、电泳介质黏度与电阻成反比。不同大小的带电分子具有不同的泳动率。不同的电泳介质具有对样品不同的分辨效果。在进行核酸电泳时，注意DNA分子的构象，在分子质量相同时，以高度超螺旋的DNA泳动速度最快，随着超螺旋程度降低，相应DNA泳动速度依次变慢，最慢者为线状双链DNA。在通常情况下，线状DNA分子在一定浓度琼脂糖介质中泳动的速度与其分子质量的对数成反比。因此，利用DNA分子长度（bp）的负对数与泳动距离作图，对于DNA片断分子质量测定方便而准确。缓冲液是电场中的导体，其种类、pH
及离子强度会直接影响电泳效果。通常要选择缓冲离子泳动速
度应和样品的泳动速度一致，否则会引起带型不均一或不对称峰的出现。在分离核酸时，常选用较高的pH值，使样品带负电荷，在电场中向正极泳动。以电泳支持介质主要可以分为聚丙烯酰胺和琼脂糖凝胶，以电泳方式可以分成垂直型和水平型。一般来说，聚丙烯酰胺凝胶电泳用来分离较短的核酸片断（5～500bp），分辨率高于琼脂糖凝胶电泳，而后者多用于0.1～60kb的较大核酸片断。垂直型电泳装置分离效果比水平型略好，多用于聚丙烯酰胺凝胶电泳。水平型电泳几乎为所有的琼脂糖电泳所采用，其优点是灌胶、制板及加样等操作都较为方便且不会因机械压力引起低浓度凝胶的破裂。
图.水平电泳装置结构示意图
琼脂糖凝胶电泳是分离、鉴定和纯化DNA片段的标准方法。该技术操作简便、快速，分离范围较广，用各种浓度的琼脂糖凝胶可以分离长度为200bp至50kb的DNA。
琼脂糖是从海藻中提取出来的一种线型高聚物。琼脂糖凝胶的制备是将琼脂糖在所需缓冲液中熔化形成清澈、透明的溶液，然后将溶液倒人胶模中，令其凝固。凝固后，琼脂糖形成一种固体基质，其密度取决于琼脂糖的浓度。在外加电场作用下，带负电荷的DNA分子向阳极迁移，迁移速率由以下参数决定：①DNA的分子大小；②琼脂糖浓度；③DNA的构象；④所加电压；⑤电场方向；⑥碱基组成与温度；⑦嵌入染料的存在；⑧电泳缓冲液的组成。DNA在琼脂糖凝胶中的电泳行为受DNA的碱基组成或凝胶电泳温度的影响不明显，琼脂糖凝胶电泳一般在室温下进行。琼脂糖浓度和所加电压对迁移速率的影响比较值得注意。一个给定大小的线状DNA片段，其迁移速率在不同浓度的琼脂糖中各不相同，采用不同浓度的凝胶有可能分辨长度范围广泛的DNA分子。在低电压时，线状DNA片段的迁移速率与所加电压成正比。但是，随着电场强度的增大，高分子量DNA片段的迁移率将以不同的幅度增长。因此，随着电压的增大，琼脂糖凝胶的有效分离范围缩小。
图. 电泳上样示意图
样品经电泳后形成的条带必须经过染色后才能被显示出，以进行分析和检测。观察琼脂糖凝胶中DNA的最简便方法是利用荧光染料进行染色。荧光物质含有一个可以嵌入
DNA
碱基之间的平面基团，DNA与之结合后在紫外线照射下呈现荧光。
实验室中最常用的荧光染料是溴化乙锭（EB）。其原理是在紫外线照射时，核酸的吸收波长为254nm的紫外线并将能量传递给溴化乙锭，同时嵌入在核酸碱基间的溴化乙锭吸收302nm和366nm波长的紫外线，来自两方面的能量最终激发出波长为590nm的红橙色的可见荧光。通常用水将EB配制成l mg/mL的贮存液，于室温下避光保存。该染料通常以0.5 μg/mL的浓度掺人到凝胶和缓冲液里，电泳后直接观察。也可在不加EB的条件下进行凝胶电泳，电泳完成后将凝胶浸在含EB(0.5 μg/mL)的电泳缓冲液或水中，于室温下染色20 min左右后观察。EB的存在将使线状双链DNA的电泳迁移率降低近15％。应该注意的是，溴化乙锭是强诱变剂，并有中度毒性，取用这种染料的溶液时务必带上防护手套。如不慎与皮肤接触，应立即用清水彻底冲洗，含有溴化乙锭的溶液在使用后，不得随意丢弃。
出于安全性的考虑，本实验对凝胶的染色未采用溴化乙锭，而是选择了更加安全低毒的GoldViewTM核酸染料。它是一种新型的核酸染料，采用琼脂糖电泳检测DNA时，GoldView与核酸结合后能产生很强的荧光信号，其灵敏度与EB相当，使用方法与之完全相同。
经过荧光染料染色后的凝胶，在暗室条件下，经过紫外灯照射激发可以出现相应的可见荧光。实验者可通过肉眼或仪器进行观察，紫外线投（反）射仪原理如图。随着科技的发展，各种自动化很高的相关仪器，设备相继问世。这些先进仪器的使用使得测量结果更加接近真实值，凝胶扫描仪和图像分析系统就是具有代表性的仪器。凝胶扫描仪主要用来对样品单向电泳后的区带进行扫描，从而得出定量的结果。凝胶扫描仪的出现大大缩短了电泳结果的分析时间，更主要的是提高了电泳结果分析的准确性。扫描仪所得的图谱通过计算机进一步进行数据加工处理，提高了数据的分辨率、准确度和灵敏度，特别是在背景扣除、积分方法等数据处理上可以根据情况来选定，从而使得测量结果与真实情况更加接近。而图像分析系统将凝胶谱图摄制下来，进一步将信息数字化，同时输入到计算机中再进行分析，使测定结果更加迅速、精确。现在的凝胶成像以及图像分析系统不但可以做蛋白质定量，而且也可以做荧光和放射自显影测量，大大地推动了分子生物学的研究进展。凝胶扫描仪的原理和结构与分光光度计基本一致。其结构分为光源、单色器（或滤光片）、样品室、光电倍增管、结果显示等几部分。样品室是为专门放置凝胶板而设计的。根据设置的不同光源，扫描仪可有不同的功能，如为紫外光源，可以扫描未经染色的凝胶。而采用可见光源的扫描仪只能对于染色凝胶进行检测。根据扫描仪视光路的不同，有透射方式测定和反射方式测定两种，前者能扫描可以透光的凝胶，而后者因光束方向可以改变，则可以扫描不透明的电泳转移膜、层析板等。
2.4大肠杆菌及质粒载体
大肠杆菌（Escherichia coli，E.coli）是革兰氏阴性短杆菌，大小0.5×1～3微米。周身鞭毛，能运动，无芽孢。能发酵多种糖类产酸、产气，是人和动物肠道中的正常栖居菌，婴儿出生后即随哺乳进入肠道，与人终身相伴，其代谢活动能抑制肠道内分解蛋白质的微生物生长，减少蛋白质分解产物对人体的危害，还能合成维生素B和K，以及有杀菌作用的大肠杆菌素。它的主要特点有以下几点：1、大肠杆菌是细菌，属于原核生物；具有由肽聚糖组成的细胞壁，只含有核糖体简单的细胞器，没有细胞核有拟核；细胞质中的质粒常用作基因工程中的运载体。2、大肠杆菌的代谢类型是异养兼性厌氧型。3、人体与大肠杆菌的关系：在不致病的情况下（正常状况下），可认为是互利共生（一般高中阶段认为是这种关系）；在致病的情况下，可认为是寄生。4、培养基中加入伊红美蓝遇大肠杆菌，菌落呈深紫色，并有金属光泽，可鉴别大肠杆菌是否存在。5、大肠杆菌在生物技术中的应用：大肠杆菌作为外源基因表达的宿主，遗传背景清楚，技术操作简单，培养条件简单，大规模发酵经济，倍受遗传工程专家的重视。目前大肠杆菌是应用最广泛，最成功的表达体系，常做高效表达的首选体系。6、大肠杆菌在生态系统中的地位，假如它生活在大肠内，属于消费者，假如生活在体外则属于分解者。7、它的基因组DNA
为拟核中的一个环状分子。同时可以有多
个环状质粒DNA。TOP10菌株属于大肠杆菌，它适用于高效的DNA克隆和质粒扩增，能保证高拷贝质粒的稳定遗传。
质粒载体pET系统可以使各种目的蛋白得以最优化表达。受噬菌体T7强转录及翻译(可选择)信号控制；表达由宿主细胞提供的T7 RNA 聚合酶诱导。T7 RNA 聚合酶机制十分有效并具选择性：充分诱导时，几乎所有的细胞资源都用于表达目的蛋白；诱导表达后仅几个小时，目的蛋白通常可以占到细胞总蛋白的50%以上，但非充分诱导时，能很容易地通过降低诱导物的浓度来削弱蛋白表达。在非诱导条件下，可以使目的基因完全处于沉默状态而不转录。用不含T7 RNA聚合酶的宿主菌克隆目的基因，即可避免因目的蛋白对宿主细胞的可能毒性造成的质粒不稳定。
3 实验材料
3.1 主要器材
电子天平，冰箱，超净工作台，摇床，高速离心机，旋涡振荡器，制冰机，微量移液器，微量离心管，微波炉，琼脂糖凝胶电泳仪（DYY-6C型，北京市六一仪器厂），紫外凝胶成像系统（DNR Bio-Imaging Systems），封口膜，一次性手套。
3.2 主要试剂
(1) 菌种：含有PET28a质粒的大肠杆菌Top10，卡纳霉素抗性。含有pUC18质粒的
大肠杆,菌氨苄青霉素抗性。
(2)
(3)
(4) LB液体培养基：酵母浸膏5 g/L，胰蛋白胨10 g/L，NaCl 10 g/L，pH 7.0 卡纳霉素：100 mg/mL Plasmid mini kit质粒小量提取试剂盒（Biomiga公司）
(5) 琼脂糖：电泳级
(6) DNA Marker IV，由6条线状双链DNA条带组成，分别为7000、5500、3500、2000、
1000和500bp
(7) GoldViewTM核酸染料（赛百盛）
(8) TAE溶液：40 mmol/L Tris-乙酸盐，1 mmol/L EDTA
(9) 10×点样缓冲液（Loading Buffer, Takara）
4 实验方法
4.1菌体培养（前期准备工作）
将50μL甘油中保存的菌液接入固体LB平板37℃过夜培养，挑取单菌落接入10mL液体LB培养基（其中卡纳霉素的浓度为50 ug/mL），37℃，200rpm过夜培养。
4.2质粒提取
按照Plasmid mini kit质粒小量提取试剂盒（Biomiga公司）进行操作：
1. 37℃过夜培养的菌液1~4 mL 13000 rpm离心1 min，收集菌体，并尽可能的去除上清，以防止后面菌液裂解不充分和沉淀不完全的情况；
2. 使用250 μl Buffer A1充分重悬沉淀；
3. 加入250 μl BufferB1后反转离心管使液体混合均匀，然后静置4 min，最好出现溶液粘稠且澄清的现象，否则可以考虑加大B1的量或者减少菌液的量；
4. 加入350 μl 冰箱预冷的Buffer N1后立即反转多次至溶液充分混匀，出现白色絮状沉淀后放置于冰浴上静置2min；
5. 室温下13000 rpm离心10 min，一次到多次直至上清中没有沉淀为止，然后将上清转入带有已平衡好的DNA柱中，放置于收集管中室温下13000 rpm离心1 min，，重复两次后弃滤液；
6. 向DNA柱中加入500 μl Buffer KB，室温13000 rpm 离心1 min，倒掉收集管中的滤液；
7. 向DNA柱中加入500 μl DNA Wash Buffer，13000 rpm室温离心1 min，重复两次后弃滤液；
8. 开盖后室温13000 rpm离心5min，或者置于超净台中风干残留的乙醇，以保证最后的洗脱效率；
9. 将纯化柱置于新的1.5 ml离心管中，加入50μl预热的Elution Buffer。室温下放置2 min后13000 rpm离心1 min，重复两次后，收集洗脱液。
10. 测定得到的纯化产物的浓度，保存于-20℃冰箱中待用。
4.3 琼脂糖凝胶电泳
A 制胶
a) 利用1×TAE溶液配制1.0%琼脂糖25ml(浓度由目的条带大小决定)，微波加热使之溶化；
b) 加入2.5μL GoldView，轻轻摇匀，避免产生气泡；
c) 将制胶床放入水平放置的制胶托盘中，插好梳子，倒入融好的琼脂糖凝胶； d) 待凝胶充分凝固(30min)后，拔下梳子。
B 加样
e) 将制胶床连同凝胶一起放入电泳槽中；
f) 加入电泳缓冲液TAE，浸没胶面1mm左右；
g) 10μL的样品和2μL点样缓冲液在封口膜上混和，然后点在点样孔中；
h) 将4μL 的DNA Marker点在点样孔中。
C 电泳
i) 盖上透明上盖；
j) 接通电源线，选择工作电压，120V，30min，打开电泳开关；
k) 当加样缓冲液中的溴酚蓝迁移至足够分离DNA片段的距离时，关闭电源，将凝胶在紫外灯下观察，并用凝胶成像系统成像保存电泳图。（请注意观察，如溴酚蓝已经接近另一端时可及时停止）
l) 如需要进行切胶回收，需要尽量保证目的DNA片段暴露在紫外灯下的时间比较短。
5 注意事项
(1)
(2)
(3)
(4)
(5)
(6) 琼脂糖溶液微波加热时间不易过长，以免液体大量蒸发； 所用器具需要高压灭菌； 碱裂解过程中混和的动作要温和，切勿振荡。 将融好的凝胶倒入制胶床前需要冷却至70℃以下，高温凝胶会使制胶床变形； 凝胶放入电泳槽时点样孔靠近阴极侧（通电后气泡较多的一侧）； 上盖的小凸块应插入槽体，并压下安全按钮；
(7) 本实验中使用的染色剂的是GoldView，无毒。但实验中依然应注意戴手套操作，
且接触染料的手不要随意接触其他器皿，养成良好的实验习惯。
6 实验结果
（1）菌液OD值
提取菌液在稀释四倍后（1ml菌液，3ml水）的吸光度为：pUC：0.443， pET：0.824。
（2）在可见光区测定提取的质粒吸光度
两份样品得到结果分别为：
结果整理如下：
表1 提取质粒各项指标
（3）电泳
琼脂凝胶中琼脂糖的浓度为1.0%
电泳得到的图片为：
从左至右依次为同组实验者的跑胶结果，较暗区域内的是我做的结果，左边两条可能浓度较低而显得稍暗，但各个条带均是清晰可见的。
根据DNA Marker可以读出四条胶带的bp值：
表2 电泳结果
从电泳结果可以看出，这次质粒提取比较成功，得到了较为理想的质粒并成功的进行了酶切，从电泳结果来看效果很好。但提取出的两份质粒的浓度均不是很高，可能是由于实验过程中某些操作不理想导致了一些损失。
酶切后的线性片段与环状质粒相比，明显可以看出环状质粒的表观分子量更小，但实际上二者是相同的，之所以电泳结果不同，是由于环状质粒在凝胶电泳中由于自身环化使其在凝胶中的阻力变小，在凝胶中运动的更快，所以表现出更“轻”的现象。
同时与同组的其他实验者相比较，与我同组的另一实验者（从左至右第二组）的实验结果与我的结果非常相近，但却与另外两组的结果却相差较大。分析实验过程，结果相近的两组均为同步进行的操作，添加的试剂与时间均完全相同，所以这可能是导致实验差异的原因。 7 思考题
（1）溶液I、II和III中各成分在裂解过程中的作用是什么？
所谓溶液I、II和III指的就是：Buffer A1、Buffer B1、Buffer N1
Buffer A1 中含有：葡萄糖、EDTA、Tris-Cl、RNase A。葡萄糖的作用是增加溶液的粘度，减少抽提过程中的机械剪切作用，防止破坏质粒DNA；EDTA的作用是络合掉Mg2+等二价金属离子，防止DNA酶对质粒分子的降解作用；Tris-Cl能使溶菌液维持溶菌作用的最适pH范围；RNase A的作用是降解RNA。
Buffer B1中含有：SDS、NaOH。SDS的作用是解聚核蛋白并与蛋白质分子结合使之变性；NaOH(pH>12)的作用是破坏氢键，使DNA分子变性。
Buffer N1：KAc、HAc。可以中和Buffer B1的碱性,使DNA复性，而由于染色体DNA与质粒DNA的性质的不同，将导致两种DNA的分离，即染色体DNA相互缠绕，而质
+粒DNA复性成环；K会与SDS形成溶解度很低的盐并与蛋白质形成沉淀而除去。溶液中
的染色体DNA也会与蛋白质-SDS形成相互缠绕的大分子物质，很容易与小分子的质粒DNA分离，此外，高盐溶液也有利于各种沉淀的形成,但需在后续的步骤中出去盐。
（2）沉淀法浓缩核酸可以采用的有机溶剂有哪些？试分析各种溶剂沉淀法的优缺点。
溶剂沉淀法是指某些有机溶剂能降低溶液的电解常数，从而增加蛋白质分子上不同电荷的引力，使溶解度的降低，同时，由于有机溶剂与水的作用，能破坏蛋白质的水化膜，故蛋白质在一定浓度的有机溶剂中可以分离出去。常使用的有机溶剂多为乙醇、丙酮、异丙醇和甲醇等。
各种溶剂沉淀法比较：
1、金属离子沉淀法要求纯度高，且耗电量大；
2、等电点法 转置复杂，要求纯度也较高；
3、盐析法的电解装置不易清洗；
4、有机溶剂沉淀法成本较低，但可能有较大毒性。
（3）所提取的质粒样品中可能含有哪些杂质，如何去除？
所提取的质粒样品中可能混有蛋白质、RNA、相关盐离子等。
对于蛋白质：酚-氯仿抽提：酚和氯仿可以使蛋白质变性，离心后变性蛋白质存在于有机相和水相之间的界面，吸取上层含有DNA与水相，继续用氯仿抽提可以进一步使残留的蛋白质变性并去除水相中残留的酚。由此得到纯度较高的DNA水溶液，可以加盐和乙醇最后经高速离心得到DNA沉淀。
对于RNA：可重新加入一定量RNase A酶，切断RNA，并再次重复进行离心过滤等操作，可除去RNA。
盐离子：清洗、离心。
（4）质粒样品中含有的各种杂质在琼脂糖中的泳动速度次序？
在制得的质粒样品中，可能会混有寡糖苷酸、RNA、染色体DNA等杂质。
泳动速度由大到小为：寡糖核苷酸>RNA>染色体DNA。
（5）超螺旋、开环和线性质粒的电泳速度次序，凝胶浓度对其影响？
电泳时，影响不同分子在凝胶中的移动速率不同的主要因素在于各种不同分子的结构与分子量的不同。物质分子的体积越大，或者分子量越大，其所受阻力越大，迁移的越慢。
当分子量相同的时候，迁移速度为：超螺旋质粒>开环质粒>线性质粒。
凝胶浓度越大，对DNA分子的粘滞力越大，DNA移动速率越慢。
（6）除琼脂糖凝胶电泳之外，质粒的分析鉴定方法还有哪些？试分析各种分析方法的优缺点。
抗生素筛选：抗生素筛选操作简单，但工作量大，并可能出现假阳性；
基因测序：基因测序结果准确，但操作较复杂，而且设备昂贵。
8 自评
这次实验总体进行的比较顺利，没有出现大的实验问题，但这次试验由于前期准备不够充分，自己对生化实验的了解也不够，所以在实验中对实验的整体把握还不够，没能理清实验的思路，对实验的方法和操作也比较生疏，所以实验过程中一直在摸着石头过河。但是通过这次实验之后，我对这个实验有了较为清晰的理解，这也是实验中的最大的收获，同时通过这次实验也接触到了一点生化实验方面的基础，虽然只是凤毛麟角，但相信这会给之后的学习带来一些帮助。