安徽农业科学。JournalofAnhuiA画.Sd.2007,35(31):9824—9827
责任编辑陈玉敏责任校对俞洁
植物体内过氧化氢酶的研究进展
宋新华,赵风云*(山东理工大学生命科学学院,山东淄博菇5049)
摘要对植物体内CATs的研究进行了简要概括,重点讨论了其生理功能。关键词抗氧化酶;过氧化氢酶;胁迫;氧还平衡
文献标识码A中图分类号Q946.5文章编号(1517—66ll(200r7)3l一09824—04
ResearchProgressSONG
OR
C毗al蛾劬Plznts
011
Y,湎-hua
et
m(couegeofLifeSciences,ShandongUniversityofTechnology,Zibo,Shandong255049)
CATs
inplants
were
Abstract
脚舶Antioxidase;Catalase;Stress;Redox
Reseawhes
alnmmSzedbriefly.Andtheirphysiologicalfunctionsequilibrium
were
discussedin
al洳iB
Catalases(CATs,Ec1.11.1.6)是生物体内主要的抗氧化酶之一,也是首次得到纯化和晶体化的酶。由于该酶与人类和动物的癌症、糖尿病及衰老等密切相关,近年来受到广泛的关注。在植物中CATs清除光呼吸、线粒体电子传递及脂肪酸p氧化等过程中产生的H2Q。大量研究表明,CAT8在植物防御、胁迫应答、延缓衰老及控制细胞的氧还平衡等方面起重要作用。CAT8家族由多基因编码,其表达和活性受环境因子如温度、光照、干旱、高盐、重金属等及生物因子如病原等的影响,并受时空的调节。.
1
草和其他植物克隆鉴定的3个CATs基因Catl、Cat2和Cat3E3J。其中,G毗l在叶内表达丰富,主要清除光呼吸产生的H202,Cat3主要在种子内表达,清除脂肪酸氧化代谢产生
的H202‘3f,二者分布于过氧化物酶体中;Cat2的表达受阱
B、臭氧HJ及病原诱导,在植物抗逆中有重要作用。在正常生长条件下,玉米Catl在盾片、叶、上胚轴及未成熟果实内表达;Cot2主要在种子萌发后的盾片中表达,在叶和上胚轴内表达量很低;Cat3主要在上胚轴中表达,叶和盾片中表达极
少bJ。Jung等研究表明,Norflurazon(NF)诱导玉米阮1、Cat2
转录水平的提高主要发生在叶内,在盾片中无明显变化怕J。创伤诱导玉米Carl、Cat2和Cat3在幼胚中表达,而在幼叶中只有Catl和Cat3表达¨7|。Cats的表达还与植物的发育阶段有关,如在玉米授粉后6~12
。18
d
CA匦在植物细胞中的分布
∞Ts主要分布在植物细胞的过氧化物酶体、乙醛酸循环
体和细胞质中,少数分布在线粒体内。现已从多种植物如瑞士甜菜(Beta
t眦/gar/s
vat.cicla)、木薯、小麦、豌豆、烟草、菜椒、
Catl和Cat3表达;授粉后15
d
向日葵、拟南芥、南瓜、玉米、水稻、大麦、马铃薯、棉花、甜薯、碱蓬等克隆和纯化到CATs。
2
d只有Catl表达;授粉后2l~30Catl和Cat2表达恻。
拟南芥Carl、Cat2、和Cat3在花序和种子内都表达,Cat2和Cat3在叶中表达量高旧J。南瓜Cats基因的表达也表现出器官特异性。Catl在种子和幼苗发育早期表达,与衰老有关;Cat2在上胚轴和成熟叶内表达,而Cat3在下胚轴和根中表达¨0I。水稻CozA主要在种子发育初期表达,在幼苗中也表达u11,大麦Carl在胚乳和发育的种子内表达,Cat2主要在幼苗地上部表达¨2|。蓖麻Catl主要在胚乳和胚轴中表达,Cat2主要在上胚轴和根内表达113J。这些结果表明,在不同的组织、器官、发育时期及环境条件下,Cats的表达具有精细的调控机制。
5
CAB的结构特点
CATs是由4个亚基组成的四聚体(Tetrmner)血红蛋白,
有保守的活化中心和铁血红蛋白结合位点,分为类型I和类型U两类。类型I由2个55kDa和2个59kDa的亚基组成,具有特有的氨基酸序列Ser-Arg-Leu;类型II由4个55kDa的亚基组成,特有的氨基酸序列是Ser-Ser-Ser。该三肽序列是过
氧化物酶体识别的目标信号,与C硒向过氧化物酶体的转
运有关[1|。
3
Cf肇B进入过氧化物酶体的机制
过氧化物酶体是CATs分布的主要细胞器。研究表明,
Cats表达的调控
不同的Cat有不同的表达方式,说明其调控机制存在差
许多过氧化物酶体蛋白通过识别过氧化物酶体目标信号(Pemxisomal
targeting
signal,PTSl)进入该细胞器,这个信号位
异。如,玉米Cat2在盾片内的表达与发育阶段有关。研究发现,该基因的表达受时间调节基因Carl的控制,而Catl的时序表达则由时间调节基因Co口'2控制L14一蚓。Guan和Scan.dalios发现,在玉米叶和胚中Carl受渗透胁迫的诱导,Cat2受渗透胁迫的诱导但受干旱抑制,Cat3只在ABA突变体叶中受高渗和脱水诱导¨6J。研究表明,顺式和反式作用因子调节玉
于PISl(PISlreeeptor-Pex5p)受体C.端。CAT8的C.端有一个
l:rl'S1.1ike
motifs.1(arni高出等研究发现CATlC.端的3氨基酸区
11.OKL)序列与Prsl一致,可能作为内在vrsl发挥
域(13
to
作用。进一步研究表明,CATl能与I:'I'S1受体(PexSp)结合,说明CATl通过PISl系统进入过氧化物酶体【2|。分布在植物过氧化物酶体的CATs都有一个保守的三肽序列,与过氧化物酶体的P131相识别。
4
米Catl的表达。外源ABA诱导的玉米细l的表达是通过
Cat1启动子上的ABRE2(Element
Responds
to
Ab∞isicAcid)和
Cats表达的时空特异性
大量研究表明,Cats的表达既与植物的发育时期有关,
CBFl(Catlbinding
factor
1)相互作用调节的,渗透胁迫诱导的
Carl的表达通过两条可变的信号途径,即依赖于ABA的途径
又具有组织和器官特异性,还受环境因子的影响。如,从烟
基金项目
作者简介收稿日期
国家自然科学基金(30671126)。
宋新华(1975一),女.山东淄博人,讲师.从事发育生物学方面的研究。*通讯作者。
2007-05.14
——通过ABRE2和CBFI相互作用进行调节和不依赖于ABA的途径——通过ABRE2和CBF2(C缸Ibindingfactor2)相互
作用进行调节u7|。臭氧诱导玉米Carl和Cat3表达而抑制Cat2表达,在外源ABA作用下,Carl表达,Cat3不变,而Cat2则降低[坞.19J,表明存在不同的调控机制。Zhong等报道,拟南
万方数据
35卷31期
宋新华等植物体内过氧化氢酶的研究进展9825
芥Cat3的表达受生物钟调控,同时光敏素(Phytoc概A和
C孵0ch盯圮1)作为协同信号进行调节啪J。Mc
Clung也发现,
拟南芥Cat2和Cat3的表达受生物钟调控.而Cat1虽受光诱导但不受生物钟调节恻9。Cat3不受光诱导,其表达高峰出现在晚上,而Cat2受光诱导,表达高峰出现在早上,二者呈现出相反的生物钟状态-21|。光诱导玉米Cat3的表达也表现出生
物钟节律【22]。Skadsen和Scandalios还发现,光诱导玉米Cat2
在叶发育过程中的表达在翻译水平受到控制,黑暗抑制mR.NA翻译多肽的延伸,从而抑制Cat2的表达∞J。玉米所有
国启动子上有抗氧化应答元件【l6|。与玉米和拟南芥不同,
烟草Carl的表达受生物节律的控制¨5|。最近Lum等也发现,小麦Catl和Cat2的转录丰度受生物钟调节并受干旱控制,Catl受黑暗调节,而Cat2则受光调节【24J。CATs基因的表达受生物钟控制说明这些基因可能与植物的代谢有关。
6
CA殛的生理功能
6.1提高植物的抗逆水平
在植物体中H202有双重作用,
适量的H2Q作为胁迫信号,通过诱导一系列防御机制来保护植物细胞免受氧化胁迫,但过量的H202则导致过氧化损伤。CATs能催化过量的H2Q的分解(2H202一Q+21420),从而减轻氧化伤害。
6.1.1抗干旱。Bailly等研究表明,干燥诱导使向13葵种子中CATs活性增加,H202和脂质过氧化水平降低,说明CATs保护种子免受脱水过程中产生的氧化损伤,也暗示H202可能
在脱水信号传导中起作用,调节国基因的表达∞1;耐旱的
干种子具有高的CATs活性也说明其在耐旱中的作用。玉米等植物的CATs活性在干旱条件下增加,但在恢复正常生长条件时,CATs活性转为正常水平协J。转大肠杆菌Cat基因的烟草,能抗除草剂百草枯,提高了在强光下的耐旱性及抗氧化胁迫的水平旧J。研究还发现,用适量ABA(10—100nm砷l/L)处理玉米苗促进H2Q的产生并明显提高SOD、CAT
和』慨等抗氧化酶的活性,增强对干旱等氧化胁迫的抵抗
能力[蚓。
6.1.2增强耐盐能力。盐胁迫诱导CATs活性的增加。Liang等研究盐敏感型和耐盐型大麦发现,用盐处理2d,显著刺激
其根内SOD、POD和CATs活性的增加,但4d后则下降,若添
加硅,则明显提高CAT8等抗氧化酶的活性,增强耐盐性【28J。用不同浓度的№a处理盐敏感和耐盐棉花,随着浓度的提高耐盐品种CATs活性逐渐减低,而100rraml/LNaCl则使盐敏感品种CATs活性提高,说明耐盐品种本身具有较高的CATs活性【29J。反义表达Cat的转基因烟草对盐胁迫更加敏感[301;盐胁迫下大麦等植物体内CATs的活性明显增加,耐盐
番茄(毋唧邮锄pennellii)根部线粒体和过氧化物酶体H202
和脂质过氧化水平低,而抗氧化酶活性如SOD、APX和CAT
活性高。这些结果表明,植物高的抗盐能力与高水平的抗氧化酶密切相关[3¨。研究发现,一定浓度的氨基乙酰丙酸(5.
aminolevulinic
acid-J姒)、7.氨基丁酸(Garam-aminobutyric
acid)
和外源GB(Glycinebetaine)能提高植物体内APXs和CATs的活性,增强对盐诱发的氧化胁迫的耐性L32J。
6.1+.3减轻重金属毒害。重金属抑制植物对P、K、S、Ca、Zn、Mn等营养元素的吸收,破坏细胞的正常代谢,导致过氧化损伤。研究表明,用一定浓度的c孑+处理豌豆等植物引起H2Q的产生,CATs活性有不同程度的增加[圳;ca2+超量积累植物
而缸鲥∞叭概根内有高的CATs活性,该植物的生长甚至
万
方数据不受C孑+的影响ⅢJ,说明高的CATs活性水平与减轻C乎+毒
害有关。用不同浓度的略+处理小麦∞J等植物幼苗,其
CATs和SOD8活性都有所提高;形+还诱导孵+积累植物
Sesban/a
drummond/i幼苗C蠕活性增加。镧([anthanum-
h3+)能提高CATs的活性,减轻pb2+的毒害。这些研究表明,CATs在抵抗重金属引起的氧化胁迫中可能发挥重要作用。
6.1.4提高对温度胁迫的抗性。研究表明,高的CATs活性与高水平的耐冷性密切相关。CATs是在热激诱导的耐冷性中起主要作用的抗氧化酶协J。Rainwater等发现,热胁迫导致番茄产量降低,耐热品种比热敏感品种降低少,在所有品种中CATs活性都明显增加旧J。马铃薯在低温贮藏期间前6周CATs活性下降,而6周后直到15周则提高,说明CATs活性的变化与低温持续时间有关。研究还发现,乙烯、ABA、ACC
(1-aminocyclopropane-1.ca]蛔,lic
acid)和GB等能诱导CATs和
PAL(Phenylalanineanrmnia-lyase)活性的提高,增强植物对温度胁迫的抗性[38J。
6.1.5抗除草剂。有证据表明,CATs能提高植物对除草剂的抗性。反义表达Cat的转基因烟草对百草枯(Methyl
violo—
gen)更加敏感㈨1;百草枯明显诱导水稻等CATs的活性增加;耐除草剂大豆(Rehmann/aglutinosa)CATs活性比除草剂敏感大豆高12倍旧J。适量的SA(Salicylicacid)预处理可增加大麦
‘
CATs等抗氧化酶的活性,提高对除草剂的抗性。
6.1.6减轻DNA损伤。研究发现,反义表达Catl的转基因烟草根内CATs活性比对照降低了60%,用前诱变剂苯二胺处理根时,诱发高水平的DNA损伤,说明CAT能减少DNA损伤㈨J。H202诱导的DNA损伤还与细胞的发育时期有关,在相同的H202水平条件下,培养2d的烟草细胞比培养12d的细胞更敏感,其CATs活性明显提高。
6.1.7保护植物减轻辐射损伤。Zaka等研究显示,Gamma辐
射引起CATfl等抗氧化酶活性的增加Hu;反义表达国的转
基因烟草和拟南芥对臭氧更敏感[30,42J,并诱导细胞死亡;紫外光诱导玉米Catl、和Cat3的表达盟J,表明CATs与保护植物减轻辐射损伤有关。
6.2提高植物的光台能力在强光等逆境条件下,植物进行光呼吸,降低光合效率。CATs减少光呼吸产生的地02,提高光合效率。CATs还能抑制ABA等引起的气孔关闭,有利于
C02进入植物体,促进光合作用…43。反义表达C缸导致H202
在光呼吸条件下过量积累,降低了植物的光合水平并诱发叶脉处的栅栏组织细胞主动死亡,说明了CATs在植物光合作用中的重要性mJ。在干旱胁迫条件下,2倍的C02明显增加
CAT、SOD的活性,抑制气孔关闭,促进光合作用。研究表明。
植物在胁迫条件下产生ABA,ABA诱导H2Q积累,进而触发保卫细胞质膜上内流K+通道的关闭,从而引起气孔关闭,CATs分解过多的H202,促进K+通道的开放,抑制气孔关闭,因而提高光合效率。转大肠杆菌Cat基因的烟草在干旱条件下,能耐受高光强,光合作用水平提高,而在相同条件下对照烟草光合作用受到严重伤害[44J。反义表达Cat的转基因烟草增强了对光的敏感性,在中等光强下[150~200minor/(m2・S)],叶片即产生坏死斑,其光合能力明显受到抑制,而呼吸速率增大ⅢJ,说明CATs是植物光合作用特别是逆境条件下保持较高光合效率不可缺少的抗氧化酶。6.3增强植物的防御能力
CATs在植物防御中有重要作
安徽农业科学加昕年
用。转基因烟草反义表达Cat,降低了清除活性氧介质(Re.
activeoxygen
化酶,在氧化胁迫下对维持细胞内的氧还平衡至关重要。参考文献
[1]ROBBIM,LAZAROW
precursor.I
PB.Peptide
intermediates)的能力,导致H202等过量积累,增加
了对病原侵染的敏感性并触发细胞程序性死亡ⅢJ,而抗耵订V(Tobacco咖“cvirus)侵染的烟草其Cat的转录受到H2Q的
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抑制,表明H’0,能调节Cat的表达。过量表达酵母踟1的
烟草,抗病毒侵染能力提高,产生的坏死斑比未转基因植物小,但其作用是局部的,没有达到整株抗病性提高的水平H刊;转烟草Ⅱ型Cat基因的马铃薯,激活了转基因植物体内同源基因的表达。也增强了抗病能力。6.4延缓衰老
Chem。1982,257(2):964—970.[2]KAMlGAKI
targeting
S,1ERAI『伽K,el
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a1.Identificationbindinganalysi8
pem酬
PISlreeep-expteaaion
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0f弭Ⅻpkin咖ala眈and
with
tor[J].PlantJ,2003,33(1):161—175.
[3]wⅡIEKE腮H.I^NcEBARTⅡsC,TIRE’C,d
of
eatalasegenesinN/ca/ana
phun删d/a(L.)[J].Proe
MONYAGU
a1.Diffe陀,ntial
NailAeed
USA。1994,91:10450—10454.
God等研究发现,人为促进棉花(Gos泖ium
[4]WIILEKENS
di碰de.and
fioxidant
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CAMPW,VAN
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M.d正.Ozone,sulfur
accumulation
h/rsulumL.)种子老化,降低了CAT8等抗氧化酶的活性。增加
ultravioletBsimilar击eels∞InRNA
d∞一
・了MDA(Malondialdehyde)和过氧化物的积累,说明种子的衰老与抗氧化水平的降低密切相关旧J。黑莓果实成熟过程中也有同样的变化,对辣椒贮存期抗氧化酶变化的研究也得到类似的结果。从木薯克隆的Catl对延缓其收割后的生理退化有重要作用旧J。Dat等也发现,反义表达Cat的转基因烟草,由于CATs活性的降低,导致H202过量积累而失去平衡,从而触发细胞主动死亡【50J。这些研究显示,高活性的CATs对延缓衰老起重要作用。6.5诱导细胞的全能性
Siminis等用烟草和葡萄藤(V/t/s
g哪目in舭毗m础,,16嘶r咖池(L.)[J].n珊Physiol,1994.
M
106:1007—1014.
[5]REDINBAUGH
tim
ofcatalaseBiochimBinphys
G,珊山sw0硼HGJ,SC^NDAll0SJG.Oaaraaeriza-
andtheirdifferential
expression
in
transcripts
maize【JJ.
Aela,1988,951(1):104一116.
S
P,SCANDALIOS
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slmnses
S,KERNODLE
to
nodlumzon-iMucod
oxidative懒inmaize【JJ.R甜呱R印,
JG.Differeraial
anti00ddant睁
2001,6(5):311—317.[7]GUAN
LM,SCANDALIOS
to
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G.嘶d咿paf0。i拈“di砌eatah№gene
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Murlding[J].FreemdicBidMed,2000,28(8):
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viniferaL.)进行原生质体(Protoplasts)培养发现,分裂的原生
[8]WADSWORTHGJ,SCANDAIJOSJG.Differmtial
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C
质体诱导过氧化物的产生,C凰活性明显增加,而未分裂原
生质体则没有明显变化,表明CATs活性在分裂原生质体专一性的增加可能与诱导细胞的全能性有关b1|。用烟草原生质体培养,研究过氧化物浓度对细胞再生的影响,也发现CATs与细胞壁的形成和细胞分裂有关【52J。大麦缺乏CATs活性的突变体细胞分裂水平降低,叶片产生坏死斑,后代存活率低,产量也低。镧能提高CATs的活性,促进I.oquatPlant.
duringkerneldevdolrnam:therdeofateedy-state
raRNAlev-
G喇,1989。10(4):304—310.
R.Regul血ond
catalasesin
Arab/dop/s[J].Free
d.eDNA
RlldieBid
Med,1997,3(3):489—496.
M,YAMADAN,K1TABAYASHIM,d
d
dotting刊diff.-一
Md
Bid,
∞tial醇雠exlmmion
three伪tala髑inpIln甲I曲[J].Plant
1997,33(1):141—155.【l1]HIGO
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K,HIGO
H.Cloning
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and岫erization
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CatA
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1et分化苗根的生长恻53。有证据表明,血红蛋白也能明显提高
棉花培养细胞中CATs的活性,刺激细胞生长。
6.6
homotngued
505—521.
[12]SKAI)sEN
R
W,mLEFEKr
catalase8treesfromMd
Gn3伊℃[J].PlantMdBid,1996.30(3):
P,HERBSrJM.Mdetxtlar
dating,
CA3Ib在控制植物细胞氧还平衡中起重要作用氧还
dur'aeteriz址ionandexpressionanalysisdtwoc,atalaaei自0zymeglmeainbar-
平衡是细胞功能的关键决定因子,任何重要的不平衡都会导致严重损伤或细胞死亡。细胞的氧还平衡与ROS(Reactive
oxygen
ley[J].PlantMdBid,1995.29(5):l005—1014.
[13]SUZUKIM,ARIOT,H,叽_|0RIT。ela1.Is0I皿i∞andcll鲫neliz嘶∞of
two
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a地differoniiallyregu・
species)的积累水平有关,现在已经清楚的认识到ROS
如H202等具有双重作用。低浓度下作为重要的信号分子,H202通过诱导细胞内一系列保护和防御基因来保护植物;高浓度下则产生危害,H202使酶的巯基氧化而失活,破坏光合
lated[Jj.PlantBid,1994,25(3):卸一516.[14]CHANDIEEJM,SCANDALIOSJ
theacutellumdmaizecad
Sci
G.m出∞0f
Carl
goneexpression
in
daⅡingearlysp,I叩}Iyaedevelopmmt[J].Proe
USA,1984,81(15):4903—4907.
NatlA・
作用等代谢过程,而且过量的H202还通过Fenton反应产生毒
性更强的OH’,由于植物体内没有清除OH’的酶,因此过多的OH‘会引起细胞过氧化,最终导致细胞死亡懈J。所以,ROS的水平必须严格控制。研究发现,CATs在控制ROS的水平和植物细胞的氧还平衡中起关键作用。CATs活性低导致ROS增加,GSH(Glutathione)库氧化,抗坏血酸减少,使植物不能产生足够的还原力,不能持续进行抗坏血酸一谷胱甘肽再循环,破坏细胞内的氧还平衡;CATs活性低的植物对盐和除草剂等环境胁迫特别敏感,离子渗漏、膜脂过氧化加重,光合色素破坏,导致光合活性和PSII效率降低∽j。CATs活性低的转基因拟南芥对臭氧和光呼吸产生的H202敏感,诱导细胞死亡【吲。研究还表明,高水平的CATs活性是植物抗氧化胁迫必需的。转基因烟草在叶绿体内表达大肠杆菌Cat增强了对光、干旱和除草剂等诱导的氧化胁迫的抗性127J。同样,转玉米Cat2的烟草对除草剂引起的伤害减轻155J。
总之,CATs是植物生命活动特别是抗逆不可缺少的抗氧
[15J
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Ca2
mRNAlevelsinmaize
seutellum[J].Molc即
fll30.1llld址ioll
in
Genel.1986,203(1):185—188.【16J
GUANsponse
L
M,SCANDALIOSJ
G.Catalase砸mai口t
re-
to山如y妇onand循m砸c砷re∞in
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【JJ.RedoxRep,2000b,5(6):377—383.[17j
GUANLM,ZHAO
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and
J,SCANDALlOSJC.Cis-dnnemsand
mlio耐dont
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mpofR[J].HamJ,2000.22(2):87—95.[18]WILLIAMSONJ
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D.SCANDAIJOS
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鹤42—8846.
abseisic面d:Vpl响6口i呻flalactivatoris嘣唧ired
expression[J].PrtcNailAcad
P,ScANDAuosJ
Sei
USA,1992,89(18):
[19]RUZSA
li∞6danl胂in
SM.MYLDNA
maize
leav荡a删to㈣[J].Re&ixRep,1999.4(3):
G.D/ffereraial№P。med∞-
95一l∞.
[20]HAlHZ.REsNIcKAs,s1'RAIfMEM.da1.F_gem0fs,仉ergisdcsigd-
eatalase
i唱by断0cj舯呲A
andctyptodmmtloncireadimdock-regulated
expression[J].PlantCell,1997,9(6):947—955.
万方数据
35卷3l期
宋新华等植物体内过氧化氢酶的研究进展
9827
【21JHAIHZ,MCCIENGCR.1l"circ&[iBlldock
circsdisfl炳[J].Md
gatesexpression
0ftwoAm-
∞|noeincitrusfruit[J].J
Asric
Food
Ql∞,2004,52(1l,:3606—3611.
bidop日isemala∞genes
to
distinctandopposite
Coa
[39]CHOID
G,Yoo
N
H,YUCY.da1.n砖activitiesdⅢ吐ioxidantemymes
Gonet,1996。25l(2):1915一加3.
in咒s阻僦to
oxidative
st∞B瞄and
hormmes
in
p{玳均u越.tole枷Rehmann/一
【复jBOⅢrR,sCANDAIJ0sJG.1nnudflLoe
d
uV_h出olltheexpressiondthe
Ⅱ∥西lo∞pl_邮晦【J].J
BiochemMol
Bid,2004,37(5):618—624.G缸2and
Cat3哪al艟e静精in脚ize[J].FreePublicBiolMed.1997.23
[40]GlCHNER
T.DNA
dalT。萨induced
byindirectanddirect
acting
muta舻ns
(3):505—514.
in
catalese-cldicient
transgenie
td3acco.Cellularandacdhl口caT娃assays
【为]slnDSENRW,SCANDALIOSJG.1h碍l砒ionalcontroldphoto-induced
[J].MuratRes,2003,535(2):187—193.
expressionof
theCat2e∞talase
gene蛐leaf
developmentin啪ize[J].[41]ZAKAR,vANDEcA辄圃E
cM,MIssErMT.Effectsoflowdlroflicdos.
ProcNailAcadSciUsA,1987。84(9):2785—2789.
∞of
ionizing
radiati∞Ollmlfioxidantenzymes
andG6PDHactivities
in&妇
[24]IENACM.P^sID砌GM,DRIscoIJ.S,eta1.nmght
controls
on坞02∞洳(Poaceae)[J].J脚Bot.2002,53(376):1979—1987.
∞aImllmi∞,删ak嘴(o叮)ac6vityando盯geneexpression
in
wh哑[J].
[42]v^卜fDENAB既LES,、HNDERAI肼ERAS,ⅥrYIsIE旺M,d
a1.Caza-
J陆Bot,2005.56(411):417—423.
J.u姗A.etlesede£doncy
drastically
irdueedby
hi曲li出in
[25]B^ⅡJYC,LEYMARIE
a1.Catdase枷vity
affects舭expre∞ion
andexptes—Ambidopsis
th日lianaEJJ.PlantJ,2004,39(1):45—58.
sion
in
developing“血Mseeds∞related
to
drying[J].JExpBot,2004,
[43]ZHANGX,ZHANGL,AN
GY,et
aI.Studies
on
ABA-irdaeed礓02
inVi-
55(396):475—483.
eia粤lⅢd
ceils
by
rI娜0f
c0Ⅲ∞mlasersc锄llil【lg面邙∞∞py【JJ.鼬Ym[26]J]ANGM。删^NGJ.Roleda13scissicacid
inWSII,I"stress-irduced
maioxi-
丽∞gWuXueBao,2001,34(1):71—76.
dantdefense
in
leavesofmaize
seed岫[J].Free
Rsdic
Res,抛2,36(9):
[44]SHIK^NAI
T,咖AT,YAMAU伽H,d
d.Inhibitiondescorbete
1001—1015.
pero商deseundero五dative
s1月in
tobacco
h衲职bacterial
emalase
in
[27]MrYA(;隔AY。nM吼M.sⅧGEDKApIl删曲"slless
S.Evaluationdthe&femed阿m
dd∞plasIs….FehsLea,1998,28(1/2):钾一51.
inchloroplaststo
causedby
parac畔using雠Ⅱ《芦血to-
45】RIZHSKYL,HAILAK.HERRE,VANBREUSEGEM
F,eta1.Double
anti.
bacco
pl岫expresing
catalasehumFacher/ch/a
c越[J].Pl眦cdl脚id,
sel3目e
Dla山lacking
ascorbate
pe砌ddase
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lesB
sensitive
too嚣.
加0D,41(3):311—320.
idative
slress
than蜊eanfiser”plaI曲hckingesccrbateper面dese
oFcH[a-
[28]IIANGY,O-IENQ,LIUQ,eta1.Exogenoussiliom(Si)increases
anfioxl—
l∞e【J].PhntJ,2002,32(3):329—342.dant
harley(Hordeum啦L.)[J].J
enzymeactivity
and础∞lipid
perofidation
in
roots
0fsalt-stressed
[46]MIITLERR,HERREH,讲IvAR
B
L,et
a1.如蹭Bnictobacco—咄
Phnt
Pnysia,2003.160(10):ll卯一
with
reduced
capability
1164.
spomive
to删h唧infection[J].ProctodeI商母re枷ve
oxygen
il吐∞∞dim∞a∞h弭目p
Nail
Acadsd
UsA,1999,96(24):
[29]GA蛋摄tfI匹TLC,JANAGc幔Ⅱ)AR
B
S,I_OWEKC,el
a1.s由血:岫tdermce
14165一14170.
andamioxidant
sI岫in
cdton
cuhm'es[J].Free]tldiC
BidMed,2002,33
[47]TALAR(ZYKo叮l舻肥a删∞on
A,IG{ZYMOWSKAM,BORUCKItobacco灿to
W,eta1.Effectdyeast
(4):502—511.responsed
tobaccoIm缸cvi珊[30]wⅡIE】日小iS
H.衄^MNI讣ic和0I
h礓02日ndisindispensabh
for蝴ddence
S。DA、,EYM。da1.Catalase
isa
sink
in
C3
pla吣[J].舳oinfettion[J].PlantPhysiol,2ID02。129:l∞2一1044.
J,
[镐]GOELA,GOELAK,SHEORANIS.凸aIlf睁ino菇dative
stress
enzymes
1997.16(16):4806—4816.dⅢingartificial
[31]MITI'OVAV,GUY
M,呲M,et
a画ng
in伽n饥(G鲫印胁托瑚咖L.)B∞ds[J].JPlant
d.Salinity咿叼JLa晒tIleantioxidative
Physid,2fib,160(9):1093一1100.
systerain
root
mitoehordria—D自m菇Ban蕾dthewildsalt.幻deE眦“_n咖
[49]REⅡIYK,HANY,TOHf钿巳J,dal.Isola土ion疆一doharltctel"is击ondac蟹・
ExpBot.2004,55(399):1105—1113.
’ssva
catalase。甲蒯during
post—harvestphysiological
deterioration[J].
[32]N啪HAR^E,KONDO
species母啤妇.Denne////[J].J
K,PAlwEzMM,da1.Role0f5-mnindevullnle
Bioehim
BiophyBAaa,2001,518(3):317—323.
acid(』姒)on(昂赫o/eracea)[J].Jactive口aygm-scavenging
system
in
NaG-treated
spimcII[50]D/ffJ
F,阿IIN尉R,BEEI球MANT,d
a1.Q瑚鲈inlIy蛔附
Pl眦Physiol,20∞,160(9):1085一1091.
idehomeostasis
trigger
m
active
celldeathproce∞in
tobBo∞【JJ.HantJ,[33]DIXITV,黝“DI吖V,SHYAMR.DifferentialantioxidativeImlxr,sesto
2003.33(4):62l一632.P..,越llltn'ninroclsandleavesofpea(P/sum“—赫L.cv.A∞d)[JJ.J
EXp
【5l】SIM]NISCl,KANEILIS
A
K,ROUBEIAKI¥ANGELAKISKA.CataleseBot.2001。52(358):1101一1109.
is
differentially蜘Pre酬in
di“dingandnon-dividing
protoplests[J].Plant
[34]BOOMINAl"HANR.DORAN
P
M.Q吐五哪tolerance
andamioxidalivede—
Physid。1994,105(4):1375—1383.
femes
in陆ry
roots
ofthecsdi'niunl
b币era∞l珊II蚰.钉“n叫“螂Ⅵ如§凹岱
[52]DEMARCOA,RoIIBⅡ^Ⅺs_^NcⅡ^ⅪsKA.1hecemple菇tyofen-
[J].BiotechnolBiceng.2003.83(2):158—167.zy血ccontrolof11ydlDgm
pero耐de∞∞倒∞may
affectthere阳H血∞【35JPANGX,’队NGD,PENGA.Effect
oflead
stressoil
the
activity
d口d商・
potential0f
plamprot叫aslB[J].PlantPIlysid,1996,110(1):137一145.
dant
enzymesin
wheat
s∞clling[J].HuanJingKeXue,2001,22(5):l嘴一
[53]FA锄ⅡH,W口吼NGS,ZI-IIGANGW,eta1.EffectdLa(HI)outhe
[36]沁J
111.
growth
and晤1190frootofIoquatplandet
in
vitro[J].Ⅸ0l
Trace
HemRes,
M,IAFUENIEMT.Cotalaseintheheat-inducedchilling
tdermm
2005,104(2):185—192
dold.stondhvblidFommemandadnfa'uits[JJ.JAgrie
Food(hⅫ,1999。
[54]VRANOVd
E,I№D,BREUSEGl2d
F
V.si酬们墙血击∞峨afida-
47(6):2410—2414.
five
[37]Mm卿t
stress[J].JE印Bd,2002,53(372):1227—1236.
D
T,G0ss町D
R,ⅧIHoll0NEP,et
a1.1here]址ion.
[55]P叫DOROsA
N,MⅥ0NA
P
V,SCANDALl06J
G.ⅢⅢlBg耐ctcl)m:x:o
shipbetweenyiddandthemlioaldantdefenseSyb-leln
in
tom址ocsgrown
under
plantsexpressingthe
maize
Cnt2
gene
havealteredcarolinelevelsthataffect
heat
sh∞[J].Free[:ladicRes,1996,25(5):421—435.
p1日m_p日th啊l
imeractiomand
resistlmce
to
oxidative
sh℃晒lJJ.1h瑙学eIlic
[38]L^n『ENIE
MT,S^LAJM,Z~巴uUASL.Active
oxygen^置0疽畸ng舶・Bes,200l,10(6):555—569.
zymm
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(上接第9816页)(5):37.’
毒
参考文献
[2]张玉芝.镁与神经系统疾病[J].微量元素与健康研究,2001,18(4):73.[I]杜利成。宋开平.微量元素与人体健康[J].中国食物与营养.2000,28
【3]中国医学科学院卫生研究所.食物成分表【M].北京:人民卫生出版社.
20130.
万
方数据
植物体内过氧化氢酶的研究进展
作者:作者单位:刊名:英文刊名:年,卷(期):被引用次数:
宋新华, 赵凤云
山东理工大学生命科学学院,山东淄博,255049安徽农业科学
JOURNAL OF ANHUI AGRICULTURAL SCIENCES2007,35(31)10次
参考文献(55条)
1. ROBBI M;LAZAROW P B Peptide mapping of peroxisomal catalase and its precursor.Comparison to theprimary wheat germ translation product 1982(02)
2. KAMIGAKI A;MANO S;TERAUCHI K Identification of peroxisomal targeting signal of pumpkin catalaseand the binding analysis with PTS1 receptor[外文期刊] 2003(01)
3. WILLEKENS H;LANGEBARTELS C;TIRE'C Differential expression of catalase genes in Nicotianaplumbaginifolia (L.) 1994
4. WILLEKENS H;VAN CAMP W;VAN MONTAGU M Ozone,sulfur dioxide,and ultraviolet B have similar effectson mRNA accumulation of antioxidant genes in Nicotiana plumbaginifolia (L.) 1994
5. REDINBAUGH M G;WADSWORTH G J;SCANDALIOS J G Characterization of catalase transcripts and theirdifferential expression in maize 1988(01)
6. JUNG S;KERNODLE S P;SCANDALIOS J G Differential antioxidant responses to norflurazon-inducedoxidative stress in maize 2001(05)
7. GUAN L M;SCANDALIOS J G Hydrogen-peroxide-mediated catalase gene expression in response towounding [外文期刊] 2000(08)
8. WADSWORTH G J;SCANDALIOS J G Differential expression of the maize catalase genes during kerneldevelopment:the role of steady-state mRNA levels 1989(04)9. MCCLUNG C R Regulation of catalases in Arabidopsis 1997(03)
10. ESAKA M;YAMADA N;KITABAYASHI M cDNA cloning and differential gene expression of three catalasesin pumpkin 1997(01)
11. HIGO K;HIGO H Cloning and characterization of the rice CatA catalase gene,a homologue of themaize Cat3 gene 1996(03)
12. SKADSEN R W;SCHULZE-LEFERT P;HERBST J M Molecular cloning,characterization and expressionanalysis of two catalase isozyme genes in barley 1995(05)
13. SUZUKI M;ARIO T;HATTORI T Isolation and characterization of two tightly linked catalase genesfrom castor bean that are differentially regulated 1994(03)
14. CHANDLEE J M;SCANDALIOS J G Regulation of Cat1 gene expression in the scutellum of maize duringearly sporophytic development 1984(15)
15. KOPCZYNSKI C C;SCANDALIOS J G Cat2 gene expression,developmental control d translatable Cat2 mRNAlevels in maize seutellum 1986(01)
16. GUAN L M;SCANDALIOS J G Catalase transcript accumulation in response to dehydration and osmoticstress in leaves of maize viviparous mutants 2000(06)
17. GUAN L M;ZHAO J;SCANDALIOS J G Cis-elements and trans-factors that regulate expression d themaize Cat1 antioxidant gene in response to ABA and osmotic stress:H2O2 is the likely intermediarysignaling molecule for the response 2000(02)
18. WILLIAMSON J D;SCANDALIOS J G Differential response of maize catalases to abscisic acid:Vp1transcriptional activator is not required for abscisic acid-regulated Cat1 expression 1992(18)19. RUZSA S M;MYLONA P;SCANDALIOS J G Differential response of antioxidant genes in maize leavesexposed to ozone 1999(03)
20. HAI H Z;RESNICK A S;STRAUME M Effects of synergistic signaling by phytochrome A and cryptochromelon circadian clock-regulated catalase expression 1997(06)
21. HAI H Z;MCCLUNG C R The circadian clock gates expression of two Arabidopsis catalase genes todistinct and opposite circadian phases 1996(02)
22. BOLDT R;SCANDALIOS J G Influence of UV-light on the expression of the Cat2 and Cat3 catalasegenes in maize 1997(03)
23. SKADSEN R W;SCANDALIOS J G Translational control of photo-induced expression of the Cat2 catalasegene during leaf development in maize[外文期刊] 1987(09)
24. LUNA C M;PASTORI G M;DRISCOLL S Drought controls on H2O2 accumulation,catalase (CAT) activity andCAT gene expression in wheat 2005(411)
25. BAILLY C;LEYMARIE J;LEHNER A Catalase activity and expression in developing sunflower seeds asrelated to drying[外文期刊] 2004(396)
26. JIANG M;ZHANG J Role of abscissic acid in water stress-induced antioxidant defense in leaves ofmaize seedlings 2002(09)
27. MIYAGAWA Y;TAMOI M;SHIGEOKA S Evaluation of the defense system in chloroplasts to photooxidativestress caused by pasquat using transgenic tobacco plants expressing catalase from Escherichia coli2000(03)
28. LIANG Y;CHEN Q;LIU Q Exogenous silicon (Si) increases antioxidant enzyme activity and reduceslipid peroxidation in roots of salt-stressed barley (Hordeum vulgare L.) 2003(10)
29. GARRATT L C;JANAGOUDAR B S;LOWE K C Salinity tolerance and antioxidant status in cotton cultures[外文期刊] 2002(04)
30. WILLEKENS H;CHAMNONGPOL S;DAVEY M Catalase is a sink for H2O2 and is indispensable for stressdefence in C3 plants[外文期刊] 1997(16)
31. MITTOVA V;GUY M;TAL M Salinity up-regulates the antioxidative system in root mitochondria andperoxisomes of the wild salt-tolerant tomato species Lycopersicon pennellii[外文期刊] 2004(399)32. NISHIHARA E;KONDO K;PARVEZ M M Role of 5-aminolevulinic acid (ALA) on active oxygen-scavengingsystem in NaCl-treated spinach (Spinacia oleracea) 2003(09)
33. DIXIT V;PANDEY V;SHYAM R Differential antioxidative responses to cadmium in roots and leaves ofpea (Pisum sativum L.cv.Azad) 2001(358)
34. BOOMINATHAN R;DORAN P M Cadmium tolerance and antioxidative defenses in hairy roots of thecadmium hyperaccumulator,Thlaspi caerulescens 2003(02)
35. PANG X;WANG D;PENG A Effect of lead stress on the activity of antioxidant enzymes in wheatseedling [期刊论文]-Huan Jing Ke Xue 2001(05)
36. SALA J M;LAFUENTE M T Catalase in the heat-induced chilling tolerance of cold-stored hybridFortune mandarin fruits 1999(06)
37. RAINWATER D T;GOSSETT D R;MILLHOLLON E P The relationship between yield and the antioxidantdefense system in tomatoes grown under heat stress 1996(05)
38. LAFUENTE M T;SALA J M;ZACARIAS L Active oxygen detoxifying enzymes and phenylalanine ammonia-lyase in the ethylene-induced chilling tolerance in citrus fruit[外文期刊] 2004(11)
39. CHOI D G;YOO N H;YU C Y The activities of antioxidant enzymes in response to oxidative stressesand hormones in paraquat-tolerant Rehmannia glutinosa plants 2004(05)
40. GICHNER T DNA damage induced by indirect and direct acting mutagens in catalase-deficienttransgenic tobacoo.Cellular and acellular comet assays 2003(02)
41. ZAKA R;VANDECASTEELE C M;MISSET M T Effects of low chronic doses of ionizing radiation onantioxidant enzymes and G6PDH activities in Stipa capillata (Poaceae)[外文期刊] 2002(376)
42. VANDENABEELE S;VANDERAUWERA S;VUYLSTEKE M Catalase deficiency drastically affects gene expressioninduced by high light in Arabidopsis thaliana 2004(01)
43. ZHANG X;ZHANG L;AN G Y Studies on ABA-induced H2O2 in Vicia guard cells by means of confocallaser scanning microscopy[期刊论文]-Shi Yan Sheng Wu Xue Bao 2001(01)
44. SHIKANAI T;TAKEDA T;YAMAUCHI H Inhibition of ascorbateperoxidase under oxidative stress intobacco having bacterial catalase in chloroplasts 1998(1-2)
45. RIZHSKY L;HALLAK-HERR E;VAN BREUSEGEM F Double antisense plants lacking ascorbate peroxidase andcatalase are less sensitive to oxidative stress than single antisense plants lacking ascorbateperoxidase or catalase 2002(03)
46. MITTLER R;HERR E H;ORVAR B L Transgenic tobacco plants with reduced capability todetoxifyreactive oxygen intermediates are hyperresponsive to pathogen infection 1999(24)
47. TALARCZYK A;KRZYMOWSKA M;BORUCKI W Effect of yeast CAT1 gene exqpression on response of tobaccoplants to tobacco mosaic virus infection 2002
48. GOEL A;GOEL A K;SHEORAN I S Changes in oxidative stress enzymes during artificial ageing incotton (Gossypium hirsutum L.) seeds 2003(09)
49. REILLY K;HAN Y;TOHME J Isolation and characterisation of a cassaya catalase expressed duringpost-harvest physiological detioration 2001(03)
50. DAT J F;PELLINEN R;BEECKMAN T Changes in hydrogen peroxide homeostasis trigger an active celldeath process in tobacco 2003(04)
51. SIMINIS C I;KANELLIS A K;ROUBELAKIS-ANGELAKIS K A Catalase is differentially expressed individing and non-dividing protoplasts 1994(04)
52. DE MARCO A;ROUBELAKIS-ANGELAKIS K A The complexity of enzymic control of hydrogen peroxideconcentration may affect the regeneration potential of plant protoplasts 1996(01)
53. FASHUI H;WEIPING S;ZHIGANG W Effect of La (Ⅲ) on the gowth and aging of root of loquat plantlet
in vitro 2005(02)
54. VRANOVá E;INZé D;BREUSEGEM F V Signal transduction during oxidative stress 2002(372)
55. POLIDOROS A N;MYLONA P V;SCANDALIOS J G Transgenic tobacco plants expressing the maize Cat2 genehave altered catalase levels that affect plant-pathogen interactions and resistance to oxidativestress 2001(06)
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1. 陈金峰. 王宫南. 程素满. CHEN Jin-feng. WANG Gong-nan. CHENG Su-man 过氧化氢酶在植物胁迫响应中的功能研究进展[期刊论文]-西北植物学报2008,28(1)
2. 南芝润. 范月仙. Nan zhirun. fan yuexian 植物过氧化氢酶的研究进展[期刊论文]-安徽农学通报2008,14(5)3. 刘冰. 梁婵娟. Liu Bing. Liang Chanjuan 生物过氧化氢酶研究进展[期刊论文]-中国农学通报2005,21(5)4. 程华. 李琳玲. 常杰. 许锋. 王燕. 程水源 植物抗氧化酶的研究进展[会议论文]-2008
5. 刘灵芝. 钟广蓉. 熊莲. 常雁红. 肖宝清. 罗晖. LIU Ling-zhi. ZHONG Guang-rong. XIONG Lian. CHANG Yan-hong. XIAO Bao-qing. LUO Hui 过氧化氢酶的研究与应用新进展[期刊论文]-化学与生物工程2009,26(3)
6. 马志科. 昝林森. 马丽. MA Zhike. ZAN Linsen. MA Li 秦川牛肝过氧化氢酶提取因素及优化的研究[期刊论文]-西北农业学报2010,19(6)
7. 沈国强. 张栋. 杨春霞. SHEN Guo-qiang. ZHANG Dong. YANG Chun-xia 牛肝过氧化氢酶提取工艺的研究[期刊论文]-化学与生物工程2008,25(1)
8. 田荟琳. 张坤生. TIAN Hui-lin. ZHANG Kun-sheng 猪血中过氧化氢酶提取及其性质研究[期刊论文]-食品科学2006,27(12)
引证文献(10条)
1. 王华芳. 展海军 小麦过氧化氢酶活动度的研究[期刊论文]-粮油食品科技 2010(2)2. 何士敏. 方平. 何莉 沙棘叶片内过氧化氢酶的研究[期刊论文]-安徽农业科学 2010(9)
3. 崔江慧. 李霄. 常金华 PEG模拟干旱胁迫对高粱幼苗生理特性的影响[期刊论文]-中国农学通报 2011(9)
4. 梁大伟. 马履一. 贾忠奎. 郝跃. 怀慧明. 朱仲龙. 王晓玲 自然降温对红花玉兰抗寒生理指标的影响[期刊论文]-林业科技开发 2010(2)
5. 赵丹. 张玉荣. 林家永. 周显青 小麦储藏品质评价指标研究进展[期刊论文]-粮食与饲料工业 2012(2)6. 韦美丽. 孙玉琴. 杨莉. 黄天卫. 刘云芝. 杨建忠 三七不同生育期叶片生理指标的变化[期刊论文]-特产研究2011(3)
7. 刘传和. 刘岩. 易干军. 钟云. 姜波 地膜覆盖对菠萝植株有关生理指标的影响[期刊论文]-热带作物学报 2008(5)8. 杨兰芳. 万佐玺. 易咏梅 叶面施硒对魔芋抗氧化作用的影响[期刊论文]-湖北农业科学 2010(6)
9. 毛红. 杨宇晖. 郭晨茜. 张青文. 刘小侠 绿盲蝽取食诱导后棉花叶片内防御酶活力与基因表达量的变化[期刊论文]-应用昆虫学报 2012(3)
10. 谭晓荣. 伏毅. 戴媛 干旱锻炼提高小麦幼苗抗旱性的抗氧化机理研究[期刊论文]-作物杂志 2009(5)
本文链接:http://d.g.wanfangdata.com.cn/Periodical_ahnykx200731011.aspx